دوره 14، شماره 9 - ( آذر 1399 )
جلد 14 شماره 9 صفحات 68-59 |
برگشت به فهرست نسخه ها
1- گروه باکتریشناسی، دانشکده پزشکی، دانشگاه تربیت مدرس ، javad.molm@yahoo.com
2- گروه باکتریشناسی، دانشکده پزشکی، دانشگاه تربیت مدرس
2- گروه باکتریشناسی، دانشکده پزشکی، دانشگاه تربیت مدرس
چکیده: (1814 مشاهده)
زمینه و هدف: استافیلوکوکوس اورئوس مقاوم به متیسیلین (MRSA: Methicillin-resistant Staphylococcus aureus) به ویژه آنهایی که دارای ژنهای پنتون-ولنتاین لکوسیدین (PVL: Panton-Valentine leukocidin) (pvl) یا ژن سندرم شوک توکسیک 1 (tsst-1) هستند، به طور فزایندهای مسئول عفونت در بیمارستان هستند. در این راستا، مطالعه حاضر با هدف بررسی فراوانی ژنهایmecA ، tsst1، pvl و گروههای اختصاصی agr در ایزولههای بالینی استافیلوکوکوس اورئوس جدا شده از بیماران بستری در بیمارستانهای شهر تهران انجام شد.
روش بررسی: به منظور انجام این مطالعه، 215 ایزوله استافیلوکوکوس اورئوس از نمونههای کلینیکی جمعآوری گردید. تمام سویهها با روشهای استاندارد تعیین هویت شدند. سپس برای بررسی مقاومتهای آنتیبیوتیکی از روش دیسک دیفیوژن استفاده شد. PCR (Polymerase chain reaction) برای تشخیص ژنهایmecA ، tsst1، pvl و گروههای اختصاصی agr انجام شد.
یافتهها: ﺑﯿﺸﺘﺮیﻦ ﻣﯿﺰان ﻣﻘﺎوﻣـﺖ در برابر تتراسایکلین (۳/۴۹ درصد) مشاهده شد. تمام سویهها در برابر ونکومایسین حساس بودند. درصد فراوانی ژنهایmecA ، tsst1 و pvl در ایزولههای بالینی استافیلوکوکوس اورئوس به ترتیب 04/46، 32/2 و 4/1 درصد بود. همچنین 20/57 درصد دارای گروه agr1، 41/14 درصد دارای agr2، 74/16 درصد دارای گروه agr3 و 62/11 درصد دارای گروه agr4 بودند.
نتیجهگیری: با توجه به تولید توکسینهای مختلف در سویههای استافیلوکوکوس اورئوس و نیز با توجه به افزایش مقاومت آنتیبیوتیکی این باکتری، تشخیص زود هنگام و درمان مناسب برای جلوگیری از پیشرفت بیماری ناشی از این باکتری امری ضروری میباشد.
روش بررسی: به منظور انجام این مطالعه، 215 ایزوله استافیلوکوکوس اورئوس از نمونههای کلینیکی جمعآوری گردید. تمام سویهها با روشهای استاندارد تعیین هویت شدند. سپس برای بررسی مقاومتهای آنتیبیوتیکی از روش دیسک دیفیوژن استفاده شد. PCR (Polymerase chain reaction) برای تشخیص ژنهایmecA ، tsst1، pvl و گروههای اختصاصی agr انجام شد.
یافتهها: ﺑﯿﺸﺘﺮیﻦ ﻣﯿﺰان ﻣﻘﺎوﻣـﺖ در برابر تتراسایکلین (۳/۴۹ درصد) مشاهده شد. تمام سویهها در برابر ونکومایسین حساس بودند. درصد فراوانی ژنهایmecA ، tsst1 و pvl در ایزولههای بالینی استافیلوکوکوس اورئوس به ترتیب 04/46، 32/2 و 4/1 درصد بود. همچنین 20/57 درصد دارای گروه agr1، 41/14 درصد دارای agr2، 74/16 درصد دارای گروه agr3 و 62/11 درصد دارای گروه agr4 بودند.
نتیجهگیری: با توجه به تولید توکسینهای مختلف در سویههای استافیلوکوکوس اورئوس و نیز با توجه به افزایش مقاومت آنتیبیوتیکی این باکتری، تشخیص زود هنگام و درمان مناسب برای جلوگیری از پیشرفت بیماری ناشی از این باکتری امری ضروری میباشد.
واژههای کلیدی: استافیلوکوکوس اورئوس، استافیلوکوکوس اورئوس مقاوم به متیسیلین، پنتون- ولنتاین لکوسیدین، سندرم شوک توکسیک 1، متیسیلین
نوع مطالعه: مقاله پژوهشي |
موضوع مقاله:
میکروب شناسی
دریافت: 1398/4/7 | پذیرش: 1399/10/2 | انتشار: 1399/9/10
دریافت: 1398/4/7 | پذیرش: 1399/10/2 | انتشار: 1399/9/10
فهرست منابع
1. Tong SY, Davis JS, Eichenberger E, Holland TL, Fowler VG. Staphylococcus aureus infections: epidemiology, pathophysiology, clinical manifestations, and management. Clin Microbiol Rev 2015;28(3):603-61. DOI: 10.1128/CMR.00134-14 [DOI:10.1128/CMR.00134-14]
2. Stapleton PD, Taylor PW. Methicillin resistance in Staphylococcus aureus: mechanisms and modulation. Sci Prog 2002;85(1):57-72. DOI: 10.3184/003685002783238870 [DOI:10.3184/003685002783238870]
3. Wielders CL, Fluit AC, Brisse S, Verhoef J, Schmitz FJ. mecA gene is widely disseminated in Staphylococcus aureus population. J Clin Microbiol 2002;40(11):3970-5. DOI: 10.1128/jcm.40.11.3970-3975.2002 [DOI:10.1128/JCM.40.11.3970-3975.2002]
4. Murray EJ, Williams P. Detection of agr-type autoinducing peptides produced by Staphylococcus aureus. Methods Mol Biol 2018;1673:89-96. DOI: 10.1007/978-1-4939-7309-5_7 [DOI:10.1007/978-1-4939-7309-5_7]
5. Arabestani MR, Rastiany S, Mousavi SF, Ghafel S, Alikhani MY. Identification of toxic shock syndrom and exfoliative toxin genes of Staphylococcus aureus in carrier persons, resistant and susceptible methicillin. Tehran Univ Med J 2015;73(8):554-60. Link
6. Todd J, Fishaut M, Kapral F, Welch T. Toxic-shock syndrome associated with phage-group-I Staphylococci. Lancet 1978;312(8100):1116-8. DOI: 10.1016/s0140-6736(78)92274-2 [DOI:10.1016/S0140-6736(78)92274-2]
7. Sindhu N, Sharma A, Jain V. Coagulase gene based molecular detection of Staphylococcus aureus directly from mastitic milk samples of Murrah buffalo. Buffalo Bull 2010;29(1):52-9. Link
8. Karmakar A, Jana D, Dutta K, Dua P, Ghosh C. Prevalence of panton-valentine leukocidin gene among community acquired Staphylococcus aureus: a Real-Time PCR study. J Pathog 2018;2018:4518541. DOI: 10.1155/2018/4518541 [DOI:10.1155/2018/4518541]
9. Rossney AS, Shore AC, Morgan PM, Fitzgibbon MM, O'Connell B, Coleman DC. The emergence and importation of diverse genotypes of methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) harboring the Panton-Valentine leukocidin gene (pvl) reveal that pvl is a poor marker for community-acquired MRSA strains in Ireland. J Clin Microbiol 2007;45(8):2554-63. DOI: 10.1128/JCM.00245-07 [DOI:10.1128/JCM.00245-07]
10. Cihanoglu N, Adaleti R, Nakipoglu Y. Investigation of fibronectin binding protein (FBP) and panton valentine leukocidin (PVL) viulance factors in clinical methicillin sensitive and resistant Staphylococcus aureus strains. Clin Lab 2019;65(1):180625. DOI: 10.7754/Clin.Lab.2018.180625 [DOI:10.7754/Clin.Lab.2018.180625]
11. Rajabi S, Shivaee A, Khosravi MA, Eshaghi M, Shahbazi S, Hosseini F. Evaluation of multidrug efflux
12. pump expression in clinical isolates of Staphylococcus aureus. Gene Rep 2020;18:100537. DOI: 10.1016/j.genrep.2019.100537 [DOI:10.1016/j.genrep.2019.100537]
13. Reller LB, Weinstein M, Jorgensen JH, Ferraro MJ. Antimicrobial susceptibility testing: a review of general principles and contemporary practices. Clin Infect Dis 2009;49(11):1749-55. DOI: 10.1086/647952 [DOI:10.1086/647952]
14. Patel JB. Performance standards for antimicrobial susceptibility testing. Wayne, PA: Clinical and Laboratory Standards Institute; 2017. Link
15. Rychlik W. OLIGO 7 primer analysis software. Methods Mol Biol 2007;402:35-60. DOI: 10.1007/978-1-59745-528-2_2 [DOI:10.1007/978-1-59745-528-2_2]
16. Karmakar A, Dua P, Ghosh C. Biochemical and molecular analysis of Staphylococcus aureus clinical isolates from hospitalized patients. Can J Infect Dis Med Microbiol 2016;2016:9041636. DOI: 10.1155/2016/9041636 [DOI:10.1155/2016/9041636]
17. Schmidt T, Kock MM, Ehlers MM. Molecular characterization of Staphylococcus aureus isolated from bovine mastitis and close human contacts in South African dairy herds: genetic diversity and inter-species host transmission. Front Microbiol 2017;8:511. DOI: 10.3389/fmicb.2017.00511 [DOI:10.3389/fmicb.2017.00511]
18. McClure JA, Conly JM, Lau V, Elsayed S, Louie T, Hutchins W, et al. Novel multiplex PCR assay for detection of the staphylococcal virulence marker Panton-Valentine leukocidin genes and simultaneous discrimination of methicillin-susceptible from-resistant staphylococci. J Clin Microbiol 2006;44(3):1141-4. DOI: 10.1128/JCM.44.3.1141-1144.2006 [DOI:10.1128/JCM.44.3.1141-1144.2006]
19. Shopsin B, Mathema B, Alcabes P, Said-Salim B, Lina G, Matsuka A, et al. Prevalence of agr specificity groups among Staphylococcus aureus strains colonizing children and their guardians. J Clin Microbiol 2003;41(1):456-9. DOI: 10.1128/jcm.41.1.456-459.2003 [DOI:10.1128/JCM.41.1.456-459.2003]
20. Javdan S, Narimani T, Abadi MS, Gholipour A. Agr typing of Staphylococcus aureus species isolated from clinical samples in training hospitals of Isfahan and Shahrekord. BMC Res Notes 2019;12(1):363. DOI: 10.1186/s13104-019-4396-8 [DOI:10.1186/s13104-019-4396-8]
21. Aslanimehr M, Tavakoli M, Peymani A, Javadi A. Frequency of tst, entB and entC genes in clinical isolates of Staphylococcus aureus isolated from Teaching Hospitals in Qazvin, Iran. Res Med 2013;37(1):62-6. Link
22. Gilot P, van Leeuwen W. Comparative analysis of agr locus diversification and overall genetic variability among bovine and human Staphylococcus aureus isolates. J Clin Microbiol 2004;42(3):1265-9. DOI: 10.1128/jcm.42.3.1265-1269.2004 [DOI:10.1128/JCM.42.3.1265-1269.2004]
23. Hosseini Alfatemi SM, Motamedifar M, Hadi N, Sedigh Ebrahim Saraie H. Analysis of virulence genes among methicillin resistant Staphylococcus aureus (MRSA) strains. Jundishapur J Microbiol 2014;7(6):e10741. DOI: 10.5812/jjm.10741 [DOI:10.5812/jjm.10741]
24. Vahdani P, Saifi M, Aslani MM, Asarian AA, Sharafi K. Antibiotic resistant patterns in MRSA isolates from patients admitted in ICU and infectious ward. Tanaffos 2004;3(11):37-44. Link
25. Molla-abbaszadeh H, Mirzaei H. Identification of panton valentine leukocidin (pvl) Genes in Staphylococcus aureus isolated from in-patients of Emam Reza and Shohada Hospitals of Tabriz by Real-Time PCR. Iran J Med Microbiol 2013;6(4):72-80. Link
26. Havaei S, Moghadam SO, Pourmand MR, Faghri J. Prevalence of genes encoding bi-component leukocidins among clinical isolates of methicillin resistant Staphylococcus aureus. Iran J Public Health 2010;39(1):8-14. Link
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |