دوره 15، شماره 3 - ( خرداد 1400 )
جلد 15 شماره 3 صفحات 229-222 |
برگشت به فهرست نسخه ها
1- گروه زیست شناسی ،پردیس علوم تحقیقات فارس ،دانشگاه آزاد اسلامی ،فارس، فارس ایران
2- -مرکز باروری و ناباروری اصفهان ،اصفهان ،ایران 4-پژوهشگاه رویان ،پژوهشکده زیست فناوری جهاد دانشگاهی ،مرکز تحقیقات پزشکی تولید مثل ،گروه زیست فناوری جانوری ،اصفهان ،ایران
3- 5-گروه زیست شناسی ، واحد مرودشت ، دانشگاه آزاد اسلامی ، مرودشت ، ایران. ،mforozanfar@yahoo.com
4- 4-پژوهشگاه رویان ،پژوهشکده زیست فناوری جهاد دانشگاهی ،مرکز تحقیقات پزشکی تولید مثل ،گروه زیست فناوری جانوری ،اصفهان ،ایران
2- -مرکز باروری و ناباروری اصفهان ،اصفهان ،ایران 4-پژوهشگاه رویان ،پژوهشکده زیست فناوری جهاد دانشگاهی ،مرکز تحقیقات پزشکی تولید مثل ،گروه زیست فناوری جانوری ،اصفهان ،ایران
3- 5-گروه زیست شناسی ، واحد مرودشت ، دانشگاه آزاد اسلامی ، مرودشت ، ایران. ،
4- 4-پژوهشگاه رویان ،پژوهشکده زیست فناوری جهاد دانشگاهی ،مرکز تحقیقات پزشکی تولید مثل ،گروه زیست فناوری جانوری ،اصفهان ،ایران
چکیده: (1839 مشاهده)
زمینه و هدف: اگر چه مورفولوژی و تحرک مناسب اسپرم می تواند یکی از مهم ترین فاکتورهای تاثیرگذار در باروری مردان باشد، با این حال، این پارامترها نمی توانند نقش تعیین کننده ای را در سلامت DNA اسپرم ایفا نمایند. در نتیجه، علاوه بر کاهش کیفیت پارامترهای اسپرمی در افراد الیگواسپرمی، احتمال دارد آسیب DNA اسپرم و یا اختلالات کروماتین هسته اسپرم نیز در ناباروری این افراد نقش داشته باشد. در این مطالعه، به بررسی ارتباط پارامترهای اسپرمی با آسیب DNA اسپرم و اختلالات کروماتین هسته اسپرم در افراد الیگو اسپرمی پرداخته شد.
روش بررسی: این مطالعه توصیفی همبستگی بر روی نمونه های منی اخذ شده از 40 مرد نابارور الیگواسپرمی انجام شد. پارامترهای اسپرمی، آسیب DNA اسپرم، هیستون باقیمانده اسپرم و کمبود پروتامین اسپرم به ترتیب توسط روش SCD، رنگ آمیزی آنیلین بلو و ارزیابی کرومومایسین A3 مورد بررسی قرار گرفت. هورمون FSH از طریق نمونه گیری از خون بیماران مورد ارزیابی قرار گرفت. برای همبستگی بین پارامترها از Pearson correlation استفاده شد.
یافته ها: دراین مطالعه، بین فراگمانتاسیون DNA اﺳﭙﺮم و سطح FSH همبستگی مثبت معنی داری وجود داشت. همچنین، بین کمبود پروتامین اسپرم و هیستون اضافی با فراگمانتاسیون DNA اﺳﭙﺮم همبستگی معنی داری مشاهده شد.
نتیجه گیری: در افراد الیگواسپرمی میزان فراگمانتاسیون DNA اﺳﭙﺮم با آنومالی های کروماتین اسپرم و آسیب به DNAی اسپرم آنها، مرتبط بوده و از دلایل احتمالی ناباروری این افراد به شمار می رود.
روش بررسی: این مطالعه توصیفی همبستگی بر روی نمونه های منی اخذ شده از 40 مرد نابارور الیگواسپرمی انجام شد. پارامترهای اسپرمی، آسیب DNA اسپرم، هیستون باقیمانده اسپرم و کمبود پروتامین اسپرم به ترتیب توسط روش SCD، رنگ آمیزی آنیلین بلو و ارزیابی کرومومایسین A3 مورد بررسی قرار گرفت. هورمون FSH از طریق نمونه گیری از خون بیماران مورد ارزیابی قرار گرفت. برای همبستگی بین پارامترها از Pearson correlation استفاده شد.
یافته ها: دراین مطالعه، بین فراگمانتاسیون DNA اﺳﭙﺮم و سطح FSH همبستگی مثبت معنی داری وجود داشت. همچنین، بین کمبود پروتامین اسپرم و هیستون اضافی با فراگمانتاسیون DNA اﺳﭙﺮم همبستگی معنی داری مشاهده شد.
نتیجه گیری: در افراد الیگواسپرمی میزان فراگمانتاسیون DNA اﺳﭙﺮم با آنومالی های کروماتین اسپرم و آسیب به DNAی اسپرم آنها، مرتبط بوده و از دلایل احتمالی ناباروری این افراد به شمار می رود.
نوع مطالعه: مقاله پژوهشي |
موضوع مقاله:
بافت شناسی و جنین شناسی
دریافت: 1399/12/3 | پذیرش: 1400/1/25 | انتشار: 1400/4/10
دریافت: 1399/12/3 | پذیرش: 1400/1/25 | انتشار: 1400/4/10
فهرست منابع
1. Wagner H, Cheng JW, Ko EY. Role of reactive oxygen species in male infertility: An updated review of literature. Arab J Urol. 2018; 16(1):35-43. [DOI:10.1016/j.aju.2017.11.001] [PMID] [DOI:10.1016/j.aju.2017.11.001]
2. Fainberg J, Kashanian JA. Recent advances in understanding and managing male infertility. F1000Res. 2019; 8(F1000 Faculty Rev):670. [DOI:10.12688/f1000research.17076.1] [PMID] [DOI:10.12688/f1000research.17076.1]
3. Menkveld R. Clinical significance of the low normal sperm morphology value as proposed in the fifth edition of the WHO Laboratory Manual for the Examination and Processing of Human Semen. Asian J Androl. 2010; 12(1):47-58. [DOI:10.1038/aja.2009.14] [PMID] [DOI:10.1038/aja.2009.14]
4. Ghieh F, Mitchell V, Mandon-Pepin B, Vialard F. Genetic defects in human azoospermia. Basic Clin Androl. 2019; 29:4. [DOI:10.1186/s12610-019-0086-6] [PMID] [DOI:10.1186/s12610-019-0086-6]
5. Deng M, Lin F, Zhou C, Chen Y, Xuan L, Wang H, et al. Determination of 27 amino acids' levels in seminal plasma of asthenospermia and oligospermia patients and diagnostic value analysis. J Pharm Biomed Anal. 2020; 184:113211. [DOI:10.1016/j.jpba.2020.113211] [PMID] [DOI:10.1016/j.jpba.2020.113211]
6. Santi D, Crépieux P, Reiter E, Spaggiari G, Brigante G, Casarini L, et al. Follicle-Stimulating Hormone (FSH) action on spermatogenesis: A focus on physiological and therapeutic roles. J Clin Med. 2020; 9(4):1014. [DOI:10.3390/jcm9041014] [PMID] [DOI:10.3390/jcm9041014]
7. Muratori M, Baldi E. Effects of FSH on sperm DNA fragmentation: Review of clinical studies and possible mechanisms of action. Front Endocrinol. 2018; 9:734. [DOI:10.3389/fendo.2018.00734] [PMID] [DOI:10.3389/fendo.2018.00734]
8. Behre HM. Clinical use of FSH in male infertility. Front Endocrinol. 2019; 10:322. [DOI:10.3389/fendo.2019.00322] [PMID] [DOI:10.3389/fendo.2019.00322]
9. Babu SR, Sadhnani MD, Swarna M, Padmavathi P, Reddy PP. Evaluation of FSH, LH and testosterone levels in different subgroups of infertile males. Indian J Clin Biochem. 2004; 19(1):45-9. [DOI:10.1007/BF02872388] [PMID] [DOI:10.1007/BF02872388]
10. Garolla A, Ghezzi M, Cosci I, Sartini B, Bottacin A, Engl B, et al. FSH treatment in infertile males candidate to assisted reproduction improved sperm DNA fragmentation and pregnancy rate. Endocrine. 2017; 56(2):416-25. [DOI:10.1007/s12020-016-1037-z] [PMID] [DOI:10.1007/s12020-016-1037-z]
11. Kim GY. What should be done for men with sperm DNA fragmentation? Clin Exp Reprod Med. 2018; 45(3):101-9. [DOI:10.5653/cerm.2018.45.3.101] [PMID] [DOI:10.5653/cerm.2018.45.3.101]
12. dos Santos Hamilton TR, D'Ávila Assumpção MEO. Sperm DNA fragmentation: Causes and identification. Zygote. 2020; 28(1):1-8. [DOI:10.1017/S0967199419000595] [PMID] [DOI:10.1017/S0967199419000595]
13. Liu T, Wang L, Chen H, Huang Y, Yang P, Ahmed N, et al. Molecular and cellular mechanisms of apoptosis during dissociated spermatogenesis. Front Physiol. 2017; 8:188. [DOI:10.3389/fphys.2017.00188] [PMID] [DOI:10.3389/fphys.2017.00188]
14. Oliver-Bonet M, Benet J, Sun F, Navarro J, Abad C, Liehr T, et al. Meiotic studies in two human reciprocal translocations and their association with spermatogenic failure. Hum Reprod. 2005; 20(3):683-8. [DOI:10.1093/humrep/deh654] [PMID] [DOI:10.1093/humrep/deh654]
15. Grootegoed JA, Siep M, Baarends WM. Molecular and cellular mechanisms in spermatogenesis. Best Pract Res Clin Endocrinol Metab. 2000; 14(3):331-43. [DOI:10.1053/beem.2000.0083] [PMID] [DOI:10.1053/beem.2000.0083]
16. Oduwole OO, Peltoketo H, Huhtaniemi IT. Role of follicle-stimulating hormone in spermatogenesis. Front Endocrinol. 2018; 9:763. [DOI:10.3389/fendo.2018.00763] [PMID] [DOI:10.3389/fendo.2018.00763]
17. Younis Jahmani MAD. Human sperm chromatin condensation assessment using Raman spectroscopy and its impact on ICSI induced fertilization and embryonic development [PhD. dissertation]. Homburg: der Universität des Saarlandes; 2020. https://publikationen.sulb.uni-saarland.de/handle/20.500.11880/30383
18. Han X, Wang Y, Wei J, Han W. Multi-antigen-targeted chimeric antigen receptor T cells for cancer therapy. J Hematol Oncol. 2019; 12:128. [DOI:10.1186/s13045-019-0813-7] [PMID] [DOI:10.1186/s13045-019-0813-7]
19. Ioannou D, Miller D, Griffin DK, Tempest HG. Impact of sperm DNA chromatin in the clinic. J Assist Reprod Genet. 2016; 33(2):157-66. [DOI:10.1007/s10815-015-0624-x] [PMID] [DOI:10.1007/s10815-015-0624-x]
20. Zhao M, Shirley CR, Hayashi S, Marcon L, Mohapatra B, Suganuma R, et al. Transition nuclear proteins are required for normal chromatin condensation and functional sperm development. Genesis. 2004; 38(4):200-13. [DOI:10.1002/gene.20019] [DOI:10.1002/gene.20019]
21. Rathke C, Baarends WM, Awe S, Renkawitz-Pohl R. Chromatin dynamics during spermiogenesis. Biochim Biophys Acta. 2014; 1839(3):155-68. [DOI:10.1016/j.bbagrm.2013.08.004] [PMID] [DOI:10.1016/j.bbagrm.2013.08.004]
22. Boissonnas CC, Jouannet P, Jammes H. Epigenetic disorders and male subfertility. Fertil Steril. 2013; 99(3):624-31. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2013.01.124] [PMID] [DOI:10.1016/j.fertnstert.2013.01.124]
23. Gou LT, Lim DH, Ma W, Aubol BE, Hao Y, Wang X, et al. Initiation of parental genome reprogramming in fertilized oocyte by splicing kinase SRPK1-catalyzed protamine phosphorylation. Cell. 2020; 180(6):1212-27.E14. [DOI:10.1016/j.cell.2020.02.020] [PMID] [DOI:10.1016/j.cell.2020.02.020]
24. Barratt CL, Aitken RJ, Björndahl L, Carrell DT, de Boer P, Kvist U, et al. Sperm DNA: Organization, protection and vulnerability: From basic science to clinical applications-a position report. Hum Reprod. 2010; 25(4):824-38. [DOI:10.1093/humrep/dep465] [PMID] [DOI:10.1093/humrep/dep465]
25. Mongioì LM, Condorelli RA, Alamo A, Cannarella R, Musso N, La Vignera S, et al. Follicle-stimulating hormone treatment and male idiopathic infertility: Effects on sperm parameters and oxidative stress indices according to FSHR c. 2039 A/G and c. -29 G/A Genotypes. J Clin Med. 2020; 9(6):1690. [DOI:10.3390/jcm9061690] [PMID] [DOI:10.3390/jcm9061690]
26. Akbari H, Saleh M, Heidari M H, Ghaffari Novin M, Azargashb E. [Evaluation of sperm parameters and chromatin abnormalities in male infertility using CASA and chromatin dispersion test (Persian)]. Res Med. 2013; 36(4):176-83. http://pejouhesh.sbmu.ac.ir/article-1-1090-en.html
27. Simon L, Castillo J, Oliva R, Lewis SE. Relationships between human sperm protamines, DNA damage and assisted reproduction outcomes. Reprod Biomed Online. 2011; 23(6):724-34. [DOI:10.1016/j.rbmo.2011.08.010] [PMID] [DOI:10.1016/j.rbmo.2011.08.010]
28. Evenson D, Wixon R. Meta-analysis of sperm DNA fragmentation using the sperm chromatin structure assay. Reprod Biomed Online. 2006; 12(4):466-72. [DOI:10.1016/S1472-6483(10)62000-7] [PMID] [DOI:10.1016/S1472-6483(10)62000-7]
29. Aoki VW, Moskovtsev SI, Willis J, Liu L, Mullen JB, Carrell DT. DNA integrity is compromised in protamine‐deficient human sperm. J Androl. 2005; 26(6):741-8. [DOI:10.2164/jandrol.05063] [PMID] [DOI:10.2164/jandrol.05063]
30. Navaeian Kalat E, Tavalaee M, Abasi H, Nasr Esfahani MH. [Comparison of sperm parameters and DNA integrity between fertile and varicocele individuals (Persian)]. J Cell Tissue. 2012; 3(2):171-7. http://jct.araku.ac.ir/article_1713.html
31. Zamani Rarani F, Golshan-Iranpour F, Dashti GR. Correlation between sperm motility and sperm chromatin/DNA damage before and after cryopreservation and the effect of folic acid and nicotinic acid on post-thaw sperm quality in normozoospermic men. Cell Tissue Bank. 2019; 20(3):367-78. [DOI:10.1007/s10561-019-09775-6] [PMID] [DOI:10.1007/s10561-019-09775-6]
32. Fernández JL, Cajigal D, López-Fernández C, Gosálvez J. Assessing sperm DNA fragmentation with the sperm chromatin dispersion test. In: Didenko V, editor. DNA Damage Detection In Situ, Ex Vivo, and In Vivo. Methods in Molecular Biology (Methods and Protocols). Vol 682. Totowa: Humana Press; 2011. pp. 291-301. [DOI:10.1007/978-1-60327-409-8_21] [DOI:10.1007/978-1-60327-409-8_21]
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |