دوره 15، شماره 11 - ( بهمن 1400 )                   جلد 15 شماره 11 صفحات 755-744 | برگشت به فهرست نسخه ها

XML English Abstract Print

Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Mirazi N, Shahabi Baher A, Izadi Z, Nourian A, Safari S. Study of Protective Effects of Calendula Officinalis L. Hydrethanolic Extract on Blood Parameters in Wistar Rats Treated With Cyclophosphamide. Qom Univ Med Sci J 2022; 15 (11) :744-755
URL: http://journal.muq.ac.ir/article-1-3343-fa.html
میرازی ناصر، شهابی باهر آیدا، ایزدی زهرا، نوریان علیرضا، صفری سمانه. اثر محافظتی عصاره هیدرواتانولی گل گیاه همیشه بهار بر پارامترهای خونی در موش‌های صحرایی نر درمان‌شده با سیکلوفسفامید. مجله دانشگاه علوم پزشکی قم. 1400; 15 (11) :744-755

URL: http://journal.muq.ac.ir/article-1-3343-fa.html

اثر محافظتی عصاره هیدرواتانولی گل گیاه همیشه بهار بر پارامترهای خونی در موش‌های صحرایی نر درمان‌شده با سیکلوفسفامید
ناصر میرازی* 1، آیدا شهابی باهر2 ، زهرا ایزدی3 ، علیرضا نوریان4 ، سمانه صفری2
1- گروه زیست‌شناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه بو‌علی سینا، همدان، ایران. ، mirazi205@gmail.com
2- گروه زیست‌شناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه بو‌علی سینا، همدان، ایران.
3- گروه علوم و مهندسی باغبانی، مجتمع آموزش عالی نهاوند، دانشگاه بوعلی سینا، همدان، ایران
4- گروه پاتوبیولوژی، دانشکده پیرا دامپزشکی، دانشگاه بوعلی سینا، همدان، ایران
چکیده:   (1697 مشاهده)
زمینه و هدف: برخی از داروهای مصرفی در شیمی‌درمانی در بافت خون‌ساز اثرات تخریبی به جا می‌گذارند. سیکلوفسفامید، از‌جمله داروهای مصرفی در گروهی از سرطان‌های بدخیم است که عوارض جانبی مخرب بر بافت خون‌ساز مغز استخوان‌ها دارد. گیاهان دارویی به دلیل خواص آنتی‌اکسیدانی و ضدالتهابی خود بر بافت مغز استخوان اثر حفاظتی دارند. هدف از این مطالعه تجربی، بررسی اثرات حفاظتی عصاره گل گیاه همیشه بهار بر پارامترهای خونی در موش‌های صحرایی نر تیمارشده با سیکلوفسفامید است.
روش بررسی: در این مطالعه تجربی، 35 سر موش صحرایی نر نژاد ویستار در محدوده وزنی 220-200 گرم استفاده شد. موش‌ها در پنج گروه هفت سری به‌طور تصادفی تقسیم شدند: کنترل (روزانه 5/0 میلی‌لیتر نرمال سالین)، گروه آزمایش (سیکلوفسفامید، پانزده میلی‌گرم بر کیلو‌گرم وزن بدن)، گروه کنترل مثبت (روزانه ششصد میلی‌گرم بر کیلوگرم وزن بدن عصاره گل گیاه همیشه بهار)، تیمار 1 (سیکلوفسفامید‌+‌عصاره گل گیاه همیشه بهار سیصد میلی‌گرم بر کیلوگرم وزن بدن، روزانه) و تیمار 2 (سیکلوفسفامید‌+‌عصاره گل گیاه همیشه بهار ششصد میلی‌گرم بر کیلوگرم وزن بدن، روزانه). سیکلوفسفامید به مدت پانزده روز تجویز شد. تمام تزریقات درون صفاقی انجام شد. در پایان آزمایش، حیوانات توسط کتامین هیدروکلراید‌+‌زایلازین بیهوش شده و خون‌گیری مستقیم از قلب جهت بررسی پارامترهای خونی تهیه شد. نمونه‌های بافت استخوان جناغ از موش‌ها جهت مطالعات هیستولوژیکی نیز تهیه و در فرمالین 10 درصد قرارگرفت. داده‌های به‌دست‌آمده با استفاده از آنالیز واریانس یک‌طرفه و تست توکی ارزیابی شدند.
یافته‌ها: نتایج این مطالعه نشان داد که سیکلوفسفامید اثرات کاهش‌دهندگی معناداری در تعداد گلبول‌های قرمز و گلبول‌های سفید، پلاکت‌ها، هموگلوبین و هماتوکریت در موش‌ها دارد. استفاده از عصاره گل گیاه همیشه بهار از اثرات مخرب سیکلوفسفامید بر بافت خون‌ساز جلوگیری کرد.
نتیجه‌گیری: مصرف عصاره هیدرواتانولی گل گیاه همیشه بهار می‌تواند‌ اثرات محافظتی بر بافت خون‌ساز مغز استخوان اعمال کند و مانع اثرات توکسیک سیکلوفسفامید بر آن می‌شود.
واژه‌های کلیدی: گل همیشه بهار، پارامترهای خونی، مغز استخوان، سیکلو فسفامید
متن کامل [PDF 2188 kb]   (447 دریافت) |   |   متن کامل (HTML)  (321 مشاهده)  
نوع مطالعه: مقاله پژوهشي | موضوع مقاله: فیزیولوژی
دریافت: 1400/9/27 | پذیرش: 1400/11/3 | انتشار: 1400/11/10
فهرست منابع
1. Zhao CY, Cheng R, Yang Z, Tian ZM. Nanotechnology for cancer therapy based on chemotherapy. Molecules. 2018; 23(4):826. [PMID] [PMCID] [DOI:10.3390/molecules23040826]
2. Duggina P, Kalla CM, Varikasuvu SR, Bukke S, Tartte V. Protective effect of centella triterpene saponinsagainst cyclophosphamide-induced immune and hepatic system dysfunction in rats: Its possible mechanisms of action. J Physiol Biochem. 2015; 71(3):435-54. [DOI:10.1007/s13105-015-0423-y] [PMID] [DOI:10.1007/s13105-015-0423-y]
3. Bokser L, Szende B, Schally AV. Protective effect of D-Type 6-lutenizing hormone-realising hormone micro capsule against cyclophosphamide-induced gonadotoxicity in feamale rats. Br J Cancer. 1990; 61(6):861-5. [DOI:10.1038/bjc.1990.192] [PMID] [PMCID] [DOI:10.1038/bjc.1990.192]
4. Taherkhani B, Mirazi N. [Study of vitis vinifera L. seed's hydroethanolic extract on blood parameters in male rats induced with cyclophosphamide (Persian)]. Razi J Med Sci. 2019; 26(7):24-32. [Link]
5. Barnes H, Holland AE, Westall GP, Goh NS, Glaspole IN. Cyclophosphamide for connective tissue disease-associated interstitial lung disease. Cochrane Database Syst Rev. 2018; 1(1):CD010908. [DOI:10.1002/14651858.CD010908.pub2] [PMID] [DOI:10.1002/14651858.CD010908.pub2]
6. Kassa Z, Asfaw Z, Demissew S. An ethnobotanical study of medicinal plants in sheka zone of southern nations nationalities and peoples regional state, Ethiopia. J Ethnobiol Ethnomed. 2020; 16(1):7. [DOI:10.1186/s13002-020-0358-4] [PMID] [PMCID] [DOI:10.1186/s13002-020-0358-4]
7. Wangchuk P, Yeshi K, Jamphel K. Pharmacological, ethnopharmacological and botanical evaluation of subtropical medicinal plants of Lower Kheng region in Bhutan. Integr Med Res. 2017; 6(4):372-87. [DOI:10.1016/j.imr.2017.08.002] [PMID] [PMCID] [DOI:10.1016/j.imr.2017.08.002]
8. Andersen FA, Bergfeld WF, Belsito DV, Hill RA, Klaassen CD, Liebler DC, et al. Final report of the cosmetic ingredient review expert panel amended safety assessment of Calendula officinalis-derived cosmetic ingredients.Int J Toxicol. 2010; 29(6 Suppl):221S-43. [DOI:10.1177/1091581810384883] [PMID] [DOI:10.1177/1091581810384883]
9. Nicolaus C, Junghanns S, Hartmann A, Murillo R, Ganzera M, Merfort I. In vitro studies to evaluate the wound healing properties of Calendula officinalis extracts. J Ethnopharmacol. 2017; 196:94-103.[DOI:10.1016/j.jep.2016.12.006] [PMID] [DOI:10.1016/j.jep.2016.12.006]
10. Efstratiou E, Hussain AI, Nigam PS, Moore JE, Ayub MA, Rao JR. Antimicrobial activity of Calendula officinalis petal extracts against fungi, as well as gram-negative and gram-positive clinical pathogens. Complement Ther Clin Pract. 2012; 18(3):173-6.[DOI:10.1016/j.ctcp.2012.02.003] [PMID] [DOI:10.1016/j.ctcp.2012.02.003]
11. Cruceriu D, Balacescu O, Rakosy E. Calendula officinalis: Potential roles in cancer treatment and palliative care. Integr Cancer Ther. 2018; 17(4):1068-78.[DOI:10.1177/1534735418803766] [PMID] [PMCID] [DOI:10.1177/1534735418803766]
12. Tanideh N, Jamshidzadeh A, Sepehrimanesh M, Hosseinzadeh M, Koohi-Hosseinabadi O, Najibi A, et al. Healing acceleration of acetic acid-induced colitis by marigold (Calendula officinalis) in male rats. Saudi J Gastroenterol. 2016; 22(1):50-6. [PMID] [PMCID] [DOI:10.4103/1319-3767.173759]
13. Robinson D, Schulz G, Langley R, Donze K, Winchester K, Rodgers C. Evidence-based practice recommendations for hydration in children and adolescents with cancer receiving intravenous cyclophosphamide. J Pediatr Oncol Nurs. 2014; 31(4):191-9. [PMID] [PMCID] [DOI:10.1177/1043454214532024]
14. Huyan XH, Lin YP, Gao T, Chen RY, Fan YM. Immunosuppressive effect of cyclophosphamide on white blood cells and lymphocyte subpopulations from peripheral blood of Balb/c mice. Int Immunopharmacol. 2011; 11(9):1293-7. [DOI:10.1016/j.intimp.2011.04.011] [PMID] [DOI:10.1016/j.intimp.2011.04.011]
15. Jiménez-Medina E, Garcia-Lora A, Paco L, Algarra I, Collado A, Garrido F. A new extract of the plant Calendula officinalis produces a dual in vitro effect: Cytotoxic anti-tumor activity and lymphocyte activation. BMC Cancer. 2006; 6:119. [PMID] [PMCID] [DOI:10.1186/1471-2407-6-119]
16. Wang S, Huang S, Ye Q, Zeng X, Yu H, Qi D, Qiao S. Prevention of cyclophosphamide-induced immunosuppression in mice with the antimicrobial peptide sublancin. J Immunol Res. 2018; 2018:4353580. [DOI:10.1155/2018/4353580] [PMID] [PMCID] [DOI:10.1155/2018/4353580]
17. Esmaeili G, Van Laere K, Muylle H, Leus L. Artificial chromosome doubling in allotetraploid Calendula officinalis. Front Plant Sci. 2020; 11:622. [PMID] [PMCID] [DOI:10.3389/fpls.2020.00622]
18. Kontoghiorghe CN, Kolnagou A, Kontoghiorghes GJ. Phytochelators intended for clinical use in iron overload, other diseases of iron imbalance and free radical pathology. Molecules. 2015; 20(11):20841-72. [DOI:10.3390/molecules201119725] [PMID] [PMCID] [DOI:10.3390/molecules201119725]
19. Neboh EE, Ufelle SA. Myeloprotective activity of crude methanolic leaf extract of Cassia occidentalis in cyclophosphamide-induced bone marrow suppression in Wistar rats. Adv Biomed Res. 2015; 4:5. [DOI:10.4103/2277-9175.148285] [PMID] [PMCID] [DOI:10.4103/2277-9175.148285]
20. Fonseca YM, Catini CD, Vicentini FT, Nomizo A, Gerlach RF, Fonseca MJ. Protective effect of Calendula officinalis extract against UVB-induced oxidative stress in skin: Evaluation of reduced glutathione levels and matrix metalloproteinase secretion. J Ethnopharmacol. 2010; 127(3):596-601. [DOI:10.1016/j.jep.2009.12.019] [PMID] [DOI:10.1016/j.jep.2009.12.019]
21. Sen A. Prophylactic and therapeutic roles of oleanolic acid and its derivatives in several diseases. World J Clin Cases. 2020; 8(10):1767-92. [DOI:10.12998/wjcc.v8.i10.1767] [PMID] [PMCID] [DOI:10.12998/wjcc.v8.i10.1767]
22. Leopoldini M, Russo N, Toscano M. The molecular basis of working mechanism of natural polyphenolic antioxidants. Food Chem. 2011; 125(2):288-306. [DOI:10.1016/j.foodchem.2010.08.012] [DOI:10.1016/j.foodchem.2010.08.012]
23. Varish DA, Amrish K, Mansi V, Vipin KG. Gupta SK. Therapeutic Potential of Calendula officinalis. Pharm Pharmacol Int J. 2018;6(2):149-155. DOI: 10.15406/ppij.2018.06.00171 [DOI:10.15406/ppij.2018.06.00171]
24. Krummenauer ME, Lopes W, Garcia AWA, Schrank A, Gnoatto SCB, Kawano DF, et al. A highly active triterpene derivative capable of biofilm damage to control Cryptococcus spp. Biomolecules. 2019, 9(12):831. [PMID] [PMCID] [DOI:10.3390/biom9120831]
25. Küpeli Akkol E, Genç Y, Karpuz B, Sobarzo-Sánchez E, Capasso R. Coumarins and coumarin-related compounds in pharmacotherapy of cancer. Cancers (Basel). 2020, 12(7):1959. [PMID] [PMCID] [DOI:10.3390/cancers12071959]
26. Paya M, Halliwell B, Hoult R. Interactions of a series of coumarins with reactive oxygen species: Scavenging of superoxide, hypochlorous acid and hydroxyl radicals. Biochem Pharmacol. 1992; 44(2):205-14. [DOI:10.1016/0006-2952(92)90002-Z] [DOI:10.1016/0006-2952(92)90002-Z]
27. Stringlis IA, de Jonge R, Pieterse CMJ. The age of coumarins in plant-microbe interactions. Plant Cell Physiol. 2019; 60(7):1405-19. [PMID] [PMCID] [DOI:10.1093/pcp/pcz076]
28. Majnooni MB, Fakhri S, Smeriglio A, Trombetta D, Croley CR, Bhattacharyya P, et al. Antiangiogenic effects of coumarins against cancer: From chemistry to medicine. Molecules. 2019; 24(23):4278. [PMID] [PMCID] [DOI:10.3390/molecules24234278]
ارسال نظر درباره این مقاله : نام کاربری یا پست الکترونیک شما:
CAPTCHA
ارسال پیام به نویسنده مسئول

بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.

کلیه حقوق این وب سایت متعلق به مجله دانشگاه علوم پزشکی قم می باشد.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق
© 2025 CC BY-NC 4.0 | Qom University of Medical Sciences Journal

Designed & Developed by : Yektaweb