دوره 14، شماره 3 - ( خرداد 1399 )                   جلد 14 شماره 3 صفحات 73-64 | برگشت به فهرست نسخه ها

XML English Abstract Print

Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Asa E, Ahmadi R, Mahmoodi M, Mohammadnia A. Determination of the Detrimental Effects of Cryopreservation Process on Sperm Functional and Molecular Parameters in Infertile Men with Asthenoteratozoospermia. Qom Univ Med Sci J 2020; 14 (3) :64-73
URL: http://journal.muq.ac.ir/article-1-2786-fa.html
آسا الهام، احمدی رحیم، محمودی مینو، محمدنیا عبدالرضا. بررسی اثرات آسیب‌زای فرایند انجماد بر ویژگی‌های عملکردی و مولکولی اسپرم مردان نابارور دچار آستنوتراتوزواسپرمیا. مجله دانشگاه علوم پزشکی قم. 1399; 14 (3) :64-73

URL: http://journal.muq.ac.ir/article-1-2786-fa.html

بررسی اثرات آسیب‌زای فرایند انجماد بر ویژگی‌های عملکردی و مولکولی اسپرم مردان نابارور دچار آستنوتراتوزواسپرمیا
الهام آسا1 ، رحیم احمدی* 2، مینو محمودی1 ، عبدالرضا محمدنیا3
1- گروه زیست‌شناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد همدان
2- گروه زیست‌شناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد همدان ، Rahahmadi2001@yahoo.com
3- گروه بیوتکنولوژی و پزشکی مولکولی، دانشکده ی فن آوری های نوین پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شهید بهشتی
چکیده:   (3319 مشاهده)
زمینه و هدف: انجماد اسپرم یک روش پرکاربرد برای نگهداری و حفظ باروری مردان در شرایط خاص مانند درمان ناباروری و بدخیمی می‌باشد. در این ارتباط، مطالعه حاضر با هدف تعیین اثرات انجماد بر پارامترهای حیاتی و مولکولی اسپرم در مردان نابارور مبتلا به آستنوتراتوزواسپرمیا انجام شد.
روش بررسی: با توجه به مطالعات پیشین در این زمینه، مایع منی 20 فرد مبتلا به آستنوتراتوزواسپرمیا جمع‌آوری شد. بخشی از هر نمونه ابتدا به عنوان نمونه تازه مورد بررسی و آنالیز قرار گرفت. در ادامه به منظور بررسی اثرات انجماد، هر نمونه به روش سریع منجمد شد و به مدت 14 روز در نیتروژن مایع ذخیره گردید. در ادامه نمونه‌ها ذوب گردیدند و در نهایت پارامترهای عملکردی با استفاده از روش آنالیز اسپرم و میزان شکست DNA (Deoxyribonucleic acid) از طریق آزمون تانل بررسی شد. درصد زنده‌مانی نیز با استفاده از رنگ‌آمیزی ائوزین- نگروزین سنجیده شد. داده‌ها با استفاده از آزمون آماری t زوجی تجزیه و تحلیل گردیدند.
یافته‌ها: فرایند انجماد سبب کاهش معنادار درصد حرکت، زنده‌مانی، غلظت و مورفولوژی طبیعی نمونه‌های اسپرم بیماران مبتلا به آستنوتراتوزواسپرمیا گردید (001/0˂P). بر مبنای نتایج، میزان شکست DNA طی فرایند انجماد افزایش معناداری یافت (01/0P<).
نتیجه‌گیری: فرایند مرسوم انجماد اثرات مخربی بر ویژگی‌های عملکردی و مولکولی اسپرم انسان دارد و می‌تواند موجب کاهش پتانسیل باروری گردد.
واژه‌های کلیدی: انجماد اسپرم، آستنوترتتوزواسپرمیا، کیفیت سمن، شکست DNA
متن کامل [PDF 623 kb]   (971 دریافت) |   |   متن کامل (HTML)  (2228 مشاهده)  
نوع مطالعه: مقاله پژوهشي | موضوع مقاله: فیزیولوژی
دریافت: 1399/1/24 | پذیرش: 1399/4/3 | انتشار: 1399/4/10
فهرست منابع
1. 1. Ozkavukcu S, Erdemli E, Isik A, Oztuna D, Karahuseyinoglu S. Effects of cryopreservation on sperm parameters and ultrastructural morphology of human spermatozoa. J Assist Reprod Genet 2008;25(8):403-11. PMID: 18704674 [DOI:10.1007/s10815-008-9232-3]
2. Saeednia S, Bahadoran H, Amidi F, Asadi MH. Impact of cryopreservation process on viability, nitric oxide and dna apoptosis in fertile human spermatozoa. Anatom Sci J 2013;10(4):17-23. Link
3. Koppers AJ, De Iuliis GN, Finnie JM, McLaughlin EA, Aitken RJ. Significance of mitochondrial reactive oxygen species in the generation of oxidative stress in spermatozoa. J Clin Endocrinol Metab 2008;93(8):3199-207. PMID: 18492763 [DOI:10.1210/jc.2007-2616]
4. Bansal AK, Bilaspuri G. Impacts of oxidative stress and antioxidants on semen functions. Vet Med Int 2011;2011:386137. PMID: 20871827 [DOI:10.4061/2011/686137]
5. Saeednia S, Amidi F, Aleyasin A, Naji M. Impact of sperm cryopreservation on semen parameters in asthenozoospermic men. Int J Health Stud 2015;1(2):21-5. Link
6. García‐Macías V, De Paz P, Martinez‐Pastor F, Álvarez M, Gomes‐Alves S, Bernardo J, et al. DNA fragmentation assessment by flow cytometry and Sperm-Bos-Halomax (bright‐field microscopy and fluorescence microscopy) in bull sperm. Int J Androl 2007;30(2):88-98. PMID: 17166172 [DOI:10.1111/j.1365-2605.2006.00723.x]
7. Yildiz C, Ottaviani P, Law N, Ayearst R, Liu L, McKerlie C. Effects of cryopreservation on sperm quality, nuclear DNA integrity, in vitro fertilization, and in vitro embryo development in the mouse. Reproduction 2007;133(3):585-95. PMID: 17379653 [DOI:10.1530/REP-06-0256]
8. Karabulut S, Demiroğlu-Zergeroğlu A, Yılmaz E, Kutlu P, Keskin İ. Effects of human sperm cryopreservation on apoptotic markers in normozoospermic and non-normozoospermic patients. Zygote 2018;26(4):308-13. PMID: 30220260 [DOI:10.1017/S0967199418000254]
9. Tavalaee M, Torki BB, Azadi L, Nasr EM. Human sperm cryopreservation update in treatment of infertility: a review study. J Cell Tissue 2018;8(4):332-53. Link
10. Cooper TG, Noonan E, von Eckardstein S, Auger J, Baker H, Behre HM, et al. World Health Organization reference values for human semen characteristics. Hum Reprod Update 2010;16(3):231-45. PMID: 19934213 [DOI:10.1093/humupd/dmp048]
11. Björndahl L, Söderlund I, Kvist U. Evaluation of the one‐step eosin‐nigrosin staining technique for human sperm vitality assessment. Hum Reprod 2003;18(4):813-6. PMID: 12660276 [DOI:10.1093/humrep/deg199]
12. Sherman JK. Synopsis of the use of frozen human semen since 1964: state of the art of human semen banking. Fertil Steril 1973;24(5):397-412. PMID: 4735423 [DOI:10.1016/S0015-0282(16)39678-9]
13. Kheirollahi-Kouhestani M, Razavi S, Tavalaee M, Deemeh M, Mardani M, Moshtaghian J, et al. Selection of sperm based on combined density gradient and Zeta method may improve ICSI outcome. Hum Reprod 2009;24(10):2409-16. PMID: 19553239 [DOI:10.1093/humrep/dep088]
14. Taher-Mofrad SMJ, Topraggaleh TR, Ziarati N, Bucak MN, Nouri M, Seifi S, et al. Knockout serum replacement is an efficient serum substitute for cryopreservation of human spermatozoa. Cryobiology 2020;92:208-14. PMID: 32004575 [DOI:10.1016/j.cryobiol.2020.01.013]
15. Nabi A, Khalili MA, Talebi AR, Mangoli E, Yari N, Nottola SA, et al. In-vitro application of pentoxifylline preserved ultrastructure of spermatozoa after vitrification in asthenozoospermic patients. Urol J 2017;14(4):4038-43. PMID: 28670673
16. Nallella KP, Sharma RK, Allamaneni SS, Aziz N, Agarwal A. Cryopreservation of human spermatozoa: comparison of two cryopreservation methods and three cryoprotectants. Fertil Steril 2004;82(4):913-8. PMID: 15482768 [DOI:10.1016/j.fertnstert.2004.02.126]
17. Mocé E, Fajardo AJ, Graham JK. Human sperm cryopreservation. EMJ 2016;1(1):86-91. Link
18. Lampiao F, Du Plessis SS. Insulin and leptin enhance human sperm motility, acrosome reaction and nitric oxide production. Asian J Androl 2008;10(5):799-807. PMID: 18645684 [DOI:10.1111/j.1745-7262.2008.00421.x]
19. Seify M, Zarabadipour M, Ghaleno LR, Alizadeh A, Valojerdi MR. The anti-oxidant roles of Taurine and Hypotaurine on acrosome integrity, HBA and HSPA2 of the human sperm during vitrification and post warming in two different temperature. Cryobiology 2019;90:89-95. PMID: 31330124 [DOI:10.1016/j.cryobiol.2019.07.004]
20. O'connell M, McClure N, Lewis S. The effects of cryopreservation on sperm morphology, motility and mitochondrial function. Hum Reprod 2002;17(3):704-9. PMID: 11870124 [DOI:10.1093/humrep/17.3.704]
21. Roque M, Esteves SC. Effect of varicocele repair on sperm DNA fragmentation: a review. Int Urol Nephrol 2018;50(4):583-603. PMID: 29542060 [DOI:10.1007/s11255-018-1839-4]
22. Di Santo M, Tarozzi N, Nadalini M, Borini A. Human sperm cryopreservation: update on techniques, effect on DNA integrity, and implications for ART. Adv Urol 2012;2012:854837. PMID: 22194740 [DOI:10.1155/2012/854837]
23. Raad G, Lteif L, Lahoud R, Azoury J, Azoury J, Tanios J, et al. Cryopreservation media differentially affect sperm motility, morphology and DNA integrity. Andrology 2018;6(6):836-45. PMID: 30105872 [DOI:10.1111/andr.12531]
24. Li MW, Lloyd KC. DNA fragmentation index (DFI) as a measure of sperm quality and fertility in mice. Sci Rep 2020;10(1):3833. PMID: 32123279 [DOI:10.1038/s41598-020-60876-9]
25. Erenpreiss J, Zubkova K. Cytochemical tests of sperm chromatin maturity. a clinician's guide to sperm DNA and chromatin damage. Berlin, Germany: Springer; 2018. P. 153-62. Link [DOI:10.1007/978-3-319-71815-6_9]
26. John Morris GJ, Acton E, Murray BJ, Fonseca F. Freezing injury: the special case of the sperm cell. Cryobiology 2012;64(2):71-80. PMID: 22197768 [DOI:10.1016/j.cryobiol.2011.12.002]
27. Baker MA, Aitken RJ. Reactive oxygen species in spermatozoa: methods for monitoring and significance for the origins of genetic disease and infertility. Reprod Biol Endocrinol 2005;3(1):67. PMID: 16313680 [DOI:10.1186/1477-7827-3-67]
28. Taylor K, Roberts P, Sanders K, Burton P. Effect of antioxidant supplementation of cryopreservation medium on post-thaw integrity of human spermatozoa. Reprod Biomed Online 2009;18(2):184-9. PMID: 19192337 [DOI:10.1016/S1472-6483(10)60254-4]
29. Majzoub A, Agarwal A. Antioxidants in sperm cryopreservation. Male infertility. Berlin, Germany: Springer; 2020. P. 671-8. Link [DOI:10.1007/978-3-030-32300-4_54]
30. Dalal J, Kumar A, Honparkhe M, Deka D, Singh N. Minimization of apoptosis-like changes in cryopreserved buffalo bull sperm by supplementing extender with Bcl-2 protein. Vet World 2016;9(5):432-6. PMID: 27284216 [DOI:10.14202/vetworld.2016.432-436]
ارسال نظر درباره این مقاله : نام کاربری یا پست الکترونیک شما:
CAPTCHA
ارسال پیام به نویسنده مسئول

بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.

کلیه حقوق این وب سایت متعلق به مجله دانشگاه علوم پزشکی قم می باشد.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق
© 2025 CC BY-NC 4.0 | Qom University of Medical Sciences Journal

Designed & Developed by : Yektaweb