دوره 16، شماره 11 - ( بهمن 1401 )
جلد 16 شماره 11 صفحات 941-928 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Hosseinchi M, Najafi G. Protective Effects of Hydroalcoholic Extract of Achillea Millefolium on In-vitro Fertilization in Streptozotocin-Induced Diabetic Male Mice. Qom Univ Med Sci J 2023; 16 (11) :928-941
URL: http://journal.muq.ac.ir/article-1-3593-fa.html
URL: http://journal.muq.ac.ir/article-1-3593-fa.html
حسینچی محمدرضا، نجفی غلامرضا. اثرات محافظتی عصاره هیدروالکلی بومادران بر توان باروری برونتنی در موشهای سوری نر دیابتیشده با استرپتوزوسین. مجله دانشگاه علوم پزشکی قم. 1401; 16 (11) :928-941
1- گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی، واحد ارومیه، دانشگاه آزاد اسلامی، ارومیه، ایران. ، dvm_06@yahoo.com
2- گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران.
2- گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران.
چکیده: (873 مشاهده)
زمینه و هدف: دیابت یکی از عوامل تأثیرگذار بر روند در باروری محسوب میشود که میتواند باعث اختلال در روند اسپرماتوژنز، تخمکگذاری و تشکیل جنین شود. دیابت یک بیماری است که اندامهای مختلف بدن را تحتتأثیر قرار میدهد. هدف از این مطالعه ارزیابی اثر محافظتی عصاره هیدروالکلی بومادران بر روی پارامترهای اسپرم و توان باروری برونتنی در موش سوری دیابتی شده است. بومادران بهعنوان یک گیاه دارویی با دارا بودن خواص آنتیاکسیدانی قوی و ضدالتهابی برای درمان بسیاری از بیماریها د مورد استفاده قرار میگیرد.
روش بررسی: در این مطالعه، 40 موش سوری به 5 گروه شامل کنترل، دیابتی، دیابتی+بومادران37/5) میلیگرم به ازای هر کیلوگرم وزن بدن روزانه)، دیابتی+بومادران (75 میلیگرم به ازای هر کیلوگرم وزن بدن روزانه) و گروه دیابتی+بومادران (150 میلیگرم به ازای هر کیلوگرم وزن بدن روزانه) تقسیم شدند. بعد از اتمام دوره تیمار 30 روزه، موشها آسانکشی شدند و پارامترهای تعداد کل اسپرم، درصد اسپرمهای زنده، درصد اسپرمهای نابالغ، درصد اسپرمهای با DNA آسیبدیده همچنین توان باروری برونتنی مورد ارزیابی قرار گرفتند. برای مقایسه میانگین بین گروهها از تحلیل واریانس یکطرفه و آزمون تعقیبی توکی استفاده شد.
یافتهها: مشخص شد در گروه دیابتی تعداد اسپرم، درصد اسپرم های زنده، درصد لقاح و درصد جنین های مرحله دوسلولی و بلاستوسیست کاهش یافته و اختلاف معناداری را در مقایسه با گروه کنترل نشان میدهد، اما در هر 3 گروه دیابتی+بومادران با دُزهای (37/5، 75 و 150) افزایش در تعداد اسپرم و درصد اسپرمهای زنده و همچنین درصد لقاح مشاهده شد که این افزایش اختلاف معناداری را فقط در دُز 150 میلیگرم در مقایسه با گروه دیابتی داشت (P˂0/05)، اما هیچ اختلاف معناداری مابین 3 گروه دیابتی+بومادران مشاهده نشد (P≥0/05).
نتیجهگیری: یافتههای این مطالعه نشان داد که عصاره هیدروالکلی بومادران به دلیل دارا بودن خواص آنتیاکسیدانی میتواند باعث بهبود پارامترهای اسپرمی و توان باروری در موشهای دیابتی شود.
روش بررسی: در این مطالعه، 40 موش سوری به 5 گروه شامل کنترل، دیابتی، دیابتی+بومادران37/5) میلیگرم به ازای هر کیلوگرم وزن بدن روزانه)، دیابتی+بومادران (75 میلیگرم به ازای هر کیلوگرم وزن بدن روزانه) و گروه دیابتی+بومادران (150 میلیگرم به ازای هر کیلوگرم وزن بدن روزانه) تقسیم شدند. بعد از اتمام دوره تیمار 30 روزه، موشها آسانکشی شدند و پارامترهای تعداد کل اسپرم، درصد اسپرمهای زنده، درصد اسپرمهای نابالغ، درصد اسپرمهای با DNA آسیبدیده همچنین توان باروری برونتنی مورد ارزیابی قرار گرفتند. برای مقایسه میانگین بین گروهها از تحلیل واریانس یکطرفه و آزمون تعقیبی توکی استفاده شد.
یافتهها: مشخص شد در گروه دیابتی تعداد اسپرم، درصد اسپرم های زنده، درصد لقاح و درصد جنین های مرحله دوسلولی و بلاستوسیست کاهش یافته و اختلاف معناداری را در مقایسه با گروه کنترل نشان میدهد، اما در هر 3 گروه دیابتی+بومادران با دُزهای (37/5، 75 و 150) افزایش در تعداد اسپرم و درصد اسپرمهای زنده و همچنین درصد لقاح مشاهده شد که این افزایش اختلاف معناداری را فقط در دُز 150 میلیگرم در مقایسه با گروه دیابتی داشت (P˂0/05)، اما هیچ اختلاف معناداری مابین 3 گروه دیابتی+بومادران مشاهده نشد (P≥0/05).
نتیجهگیری: یافتههای این مطالعه نشان داد که عصاره هیدروالکلی بومادران به دلیل دارا بودن خواص آنتیاکسیدانی میتواند باعث بهبود پارامترهای اسپرمی و توان باروری در موشهای دیابتی شود.
نوع مطالعه: مقاله پژوهشي |
موضوع مقاله:
بافت شناسی و جنین شناسی
دریافت: 1401/7/22 | پذیرش: 1401/9/8 | انتشار: 1401/10/11
دریافت: 1401/7/22 | پذیرش: 1401/9/8 | انتشار: 1401/10/11
فهرست منابع
1. Abu-Bakar U, Subramaniam P, Kamar Bashah NA, Kamalrudin A, Kamaruzaman KA, Jasamai M, et al. Sperm proteomics analysis of diabetic induced male rats as influenced by Ficus carica leaf extract. Processes. 2020; 8(4):395. [DOI:10.3390/pr8040395] [DOI:10.3390/pr8040395]
2. Rodgers RJ, Avery JC, Moore VM, Davies MJ, Azziz R, Stener-Victorin E, et al. Complex diseases and co-morbidities: Polycystic ovary syndrome and type 2 diabetes mellitus. Endocr Connect. 2019; 8(3):71-5. [PMID] [PMCID] [DOI:10.1530/EC-18-0502]
3. Faghihi G, Radan M. Side effects of herbal drugs used in dermatologic disorders. J Cosmet Dermatol Sci Applications. 2011; 1(1):1-3. [DOI:10.4236/jcdsa.2011.11001] [DOI:10.4236/jcdsa.2011.11001]
4. Asghari B, Mafakheri S, Zengin G, Dinparast L, Bahadori MB. In-depth study of phytochemical composition, antioxidant activity, enzyme inhibitory and antiproliferative properties of Achillea filipendulina: A good candidate for designing biologically-active food products. Food Measure. 2020; 14(4):2196-208. [Link] [DOI:10.1007/s11694-020-00466-5]
5. Benedek B, Kopp B, Melzig MF. Achillea millefolium L. s.l. -- is the anti-inflammatory activity mediated by protease inhibition? J Ethnopharmacol. 2007; 113(2):312-7. [PMID] [DOI:10.1016/j.jep.2007.06.014]
6. Petlevski R, Hadzija M, Slijepcevic M, Juretic D. Effect of anti diabet is herbal preparation on serum glucose and fructosamine in NOD mice. J Ethnopharmacol. 2001; 75(2-3):181-4. [PMID] [DOI:10.1016/S0378-8741(01)00177-5]
7. Hasanzadeh Khosh A, Hasanzadeh S, Shalizar Jalali A. Ameliorative effects of Achillea millefolium inflorescences alcoholic extract on nicotine-induced reproductive toxicity in male rat: Apoptotic and biochemical evidences. Vet Res Forum. 2017; 8(2):97-104. [PMID]
8. Jalali Nadoushan MR, Ghosian Moghaddam MH, Chegini V, Jafari H, Zaeri F. [Evaluation of antispermatogenic effects of yarrow in mice (Persian)]. Tabib-e- Shargh. 2008; 10(3):219-25. [Link]
9. Montanari T, de Carvalho JE, Dolder H. Antispermatogenic effect of Achillea millefolium L. in mice. Contraception. 1998; 58(5):309-13. [PMID] [DOI:10.1016/S0010-7824(98)00107-3]
10. Cavalcanti AM, Baggio CH, Freitas CS, Rieck L, de Sousa RS, Da Silva-Santos JE, et al. Safety and antiulcer efficacy studies of Achillea millefolium L. after chronic treatment in Wistar rats. J Ethnopharmacol. 2006; 107(2):277-284. [PMID] [DOI:10.1016/j.jep.2006.03.011]
11. Nasr-Esfahani MH, Razavi S, Mardani M. Relation between different human sperm nuclear maturity tests and in vitro fertilization. J Assist Reprod Genet. 2001; 18(4):219-25. [PMID] [PMCID] [DOI:10.1023/A:1009412130417]
12. Erenpreiss J, Bars J, Lipatnikova V, Erenpreisa J, Zalkalns J. Comparative study of cytochemical tests for sperm chromatin integrity. J Androl. 2001; 22(1):45-53. [PMID]
13. Weisbroth SH. The laboratory rat. New York: Elsevier; 2013. [Link]
14. Jafari H, Mirzaiinajmabadi K, Roudsari RL, Rakhshkhorshid M. The factors affecting male infertility: A systematic review. Int J Reprod Biomed. 2021; 19(8):681-8. [PMID] [PMCID] [DOI:10.18502/ijrm.v19i8.9615]
15. Rezaei N, Mardanshahi T, Shafaroudi MM, Abedian S, Mohammadi H, Zare Z. Effects of L-carnitine on the follicle-stimulating hormone, luteinizing hormone, testosterone, and testicular tissue oxidative stress levels in streptozotocin-induced diabetic rats. J Evid Based Integr Med. 2018; 23:2515690X18796053. [PMID] [PMCID] [DOI:10.1177/2515690X18796053]
16. Kofuji K, Aoki A, Tsubaki K, Konishi M, Isobe T, Murata Y. Antioxidant activity of β-Glucan. ISRN Pharm. 2012; 2012:125864. [DOI:10.5402/2012/125864] [PMID] [PMCID] [DOI:10.5402/2012/125864]
17. Lombardo YB, Chicco AG. Effects of dietary polyunsaturated n-3 fatty acids on dyslipidemia and insulin resistance in rodents and humans. A review. J Nutr Biochem. 2006; 17(1):1-13. [PMID] [DOI:10.1016/j.jnutbio.2005.08.002]
18. Mahdavi R, Nemati A, Feizi E, Amani M, Alimohammadi Asl H, Mazani M, et al. [Effect of ω 3 fatty acid supplementation on oxidative stress in gastric cancer patients undergoing chemotherapy (Persian)]. J Ardabil Univ Med Sci. 2011; 11(2):166-75. [DOI:10.3923/javaa.2012.1858.1863] [DOI:10.3923/javaa.2012.1858.1863]
19. McLean MP, Warden KJ, Sandhoff TW, Irby RB, Hales DB. Altered ovarian sterol carrier protein expression in the pregnant streptozotocin-treated diabetic rat. Biol Reprod. 1996; 55(1):38-46. [PMID] [DOI:10.1095/biolreprod55.1.38]
20. Nasr-Esfahani M, Johnson MH, Aitken RJ. The effect of iron and iron chelators on the in-vitro block to development of the mouse preimplantation embryo: BAT6 a new medium for improved culture of mouse embryos in vitro. Hum Reprod. 1990; 5(8):997-1003. [PMID] [DOI:10.1093/oxfordjournals.humrep.a137235]
21. Zhang P, Li T, Wu X, Nice EC, Huang C, Zhang Y. Oxidative stress and diabetes: Antioxidative strategies. Front Med. 2020; 14(5):583-600. [PMID] [DOI:10.1007/s11684-019-0729-1]
22. Traish AM, Cushman T, Hoyt R, Kim N. Diabetes attenuates female genital sexual arousal response via disruption of estrogen action. Korean J Urol. 2009; 50(3):211-23. [DOI:10.4111/kju.2009.50.3.211] [DOI:10.4111/kju.2009.50.3.211]
23. Venkateswaran S, Pari L. Effect of Coccinia indica leaves on antioxidant status in streptozotocin-induced diabetic rats. J Ethnopharmacol. 2003; 84(2-3):163-8. [PMID] [DOI:10.1016/S0378-8741(02)00294-5]
24. Takahashi M. Oxidative stress and redox regulation on in vitro development of mammalian embryos. J Reprod Dev. 2012; 58(1):1-9. [DOI:10.1262/jrd.11-138n] [PMID] [DOI:10.1262/jrd.11-138N]
25. Vujkovic M, de Vries JH, Dohle GR, Bonsel GJ, Lindemans J, Macklon NS, et al. Associations between dietary patterns and semen quality in men undergoing IVF/ICSI treatment. Hum Reprod. 2009; 24(6):1304-12. [DOI:10.1093/humrep/dep024][PMID] [DOI:10.1093/humrep/dep024]
26. Villalva M, Jaime L, Villanueva-Bermejo D, Lara B, Fornari T, Reglero G, et al. Supercritical anti-solvent fractionation for improving antioxidant and anti-inflammatory activities of an Achillea millefolium L. extract. Food Res Int. 2019; 115:128-34. [PMID] [DOI:10.1016/j.foodres.2018.08.027]
27. Karabay-Yavasoglu NU, Karamenderes C, Baykan S, Apaydin S. Antinociceptive and anti-inflammatory activities and acute toxicity of achillea nobilis. subsp. neilreichii. Extract in mice and rats. Pharm Biol. 2007; 45(2):162-8. [DOI:10.1080/13880200601113149] [DOI:10.1080/13880200601113149]
28. Potrich FB, Allemand A, da Silva LM, Dos Santos AC, Baggio CH, Freitas CS, et al. Antiulcerogenic activity of hydroalcoholic extract of Achillea millefolium L.:Involvement of the antioxidant system. J Ethnopharmacol. 2010; 130 (1):85-92. [PMID] [DOI:10.1016/j.jep.2010.04.014]
29. Konyalioglu S, Karamenderes C. The protective effects of Achillea L. species native in Turkey against H2O2-induced oxidativedamage in human erythrocytes and leucocyte. J Ethnopharmacol. 2005; 102(2):221-7. [PMID] [DOI:10.1016/j.jep.2005.06.018]
30. Dalsenter PR, Cavalcanti AM, Andrade AJ, Araújo SL, Marques MC. Reproductive evaluation of aqueous crude extract of Achillea millefolium L. (Asteraceae) in Wistar rats. Reprod Toxicol. 2004; 18(6):819-23. [PMID] [DOI:10.1016/j.reprotox.2004.04.011]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
حق تالیف (کپی رایت) برای مولفان محفوظ است.
صاحب امتیاز: دانشگاه علوم پزشکی قم
ناشر: انتشارات دانشگاه علوم پزشکی قم
شاپا چاپی: 7799-1375
شاپا الکترونیک: 1375-2008
ایمیل مجله: journal@muq.ac.ir
j.muq.ac@gmail.com
