دوره 15، شماره 7 - ( مهر 1400 )                   جلد 15 شماره 7 صفحات 489-482 | برگشت به فهرست نسخه ها

XML English Abstract Print

Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Monadi M, Motamedi H, Sanei N. The Effects of Ethanol and Methanol Extracts of Ziziphus Spina-christi, Peganum Harmala, Salvia Officinalis, and Querqus Brantii on the Growth and Biofilm Formation by Staphylococcus Aureus in Vitro. Qom Univ Med Sci J 2021; 15 (7) :482-489
URL: http://journal.muq.ac.ir/article-1-3011-fa.html
منادی مریم، معتمدی حسین، صانعی نازنین. اثر عصاره‌های اتانولی و متانولی گیاهان سدر، اسفند، مریم گلی و بلوط بر تشکیل بیوفیلم توسط استافیلوکوکوس اورئوس در شرایط برون‌تنی. مجله دانشگاه علوم پزشکی قم. 1400; 15 (7) :482-489

URL: http://journal.muq.ac.ir/article-1-3011-fa.html

اثر عصاره‌های اتانولی و متانولی گیاهان سدر، اسفند، مریم گلی و بلوط بر تشکیل بیوفیلم توسط استافیلوکوکوس اورئوس در شرایط برون‌تنی
مریم منادی1 ، حسین معتمدی2 ، نازنین صانعی* 3
1- گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
2- مرکز تحقیقات بیوتکنولوژی و علوم زیستی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران.
3- گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران ، rockdigo693@gmail.com
چکیده:   (1802 مشاهده)
زمینه و هدف: گیاهان دارویی از مهم‌ترین منابع طبیعی هر کشور هستند. هدف مطالعه حاضر بررسی اثر ضد بیوفیلمی عصاره‌های اتانولی و متانولی برگ سدر، دانه اسفند، برگ مریم گلی و دانه بلوط بر رشد و تشکیل بیوفیلم استافیلوکوکوس اورئوس است.
روش بررسی: عصاره‌های گیاهی با روش خیساندن در اتانول و متانول تهیه شدند. پس از ارزیابی میزان حساسیت استافیلوکوکوس اورئوس به انواع آنتی‌بیوتیک‌ها، اثر مهارکنندگی عصاره‌ها با روش انتشار دیسک بررسی و سپس اثر بازدارندگی عصاره‌ها بر تشکیل بیوفیلم توسط این باکتری در چاهک‌های پلیت میکروتیتر 96 خانه‌ای ارزیابی شد. میانگین‌ها با آزمون ANOVA مقایسه شد.
یافته‌ها: عصاره متانولی دانه‌های اسفند و بلوط در غلظت‌های 350 و 450 میلی‌گرم بر میلی‌لیتر، اثر بازدارندگی بیشتری بر استافیلوکوکوس اورئوس نسبت به سایر عصاره‌ها و آنتی‌بیوتیک‌های سنتزی دارد. غلظت 350 میلی‌گرم بر میلی‌لیتر عصاره‌های متانولی برگ مریم گلی و دانه اسفند و غلظت 350 میلی‌گرم بر میلی‌لیتر عصاره اتانولی برگ مریم گلی، کمترین غلظتی بودند که بیشترین اثر مهاری بر تشکیل بیوفیلم توسط استافیلوکوکوس اورئوس نشان دادند. عصاره‌های دیگر در غلظت‌های بالاتر تشکیل بیوفیلم را مهار کردند. کمترین اثر ضد بیوفیلمی توسط عصاره‌های اتانولی و متانولی برگ سدر مشاهده شد.
نتیجه‌گیری: عصاره‌های مورد بررسی، به‌خصوص عصاره متانولی برگ مریم گلی و دانه اسفند و عصاره اتانولی برگ مریم گلی گزینه‌های مناسبی برای کنترل بیوفیلم‌های استافیلوکوکی هستند و بررسی‌های درون‌تنی برای کاربرد بالینی آنها پیشنهاد می‌شود.
واژه‌های کلیدی: اثر ضد بیوفیلم، گیاهان دارویی، مریم گلی، استافیلوکوکوس اورئوس، عصاره اتانولی، عصاره متانولی
متن کامل [PDF 4045 kb]   (599 دریافت) |   |   متن کامل (HTML)  (546 مشاهده)  
نوع مطالعه: مقاله پژوهشي | موضوع مقاله: طب سنتی
دریافت: 1399/9/26 | پذیرش: 1400/6/31 | انتشار: 1400/7/10
فهرست منابع
1. 1. Klink B. Alternative medicines: is natural really better. Drug Top. 1997 Jan;141(2):99-100. Link
2. Altemimi A, Lakhssassi N, Baharlouei A, Watson D, Lightfoot D. Phytochemicals: Extraction, isolation, and identification of bioactive compounds from plant extracts. Plants 2017; 6(4): 42-65. Link [DOI:10.3390/plants6040042]
3. Torabzadeh Khorasani P, Panahi P, Sabokbar A, Mokhtari A. Antibacterial activity evaluation of Ephedra Major Host acetonic, aqueous and alcoholic extracts against standard strains of E. coli, P. aeruginosa, S. aureus and S. pyogenes. J Comp Pathobiol 2009; 6(4): 91-98. Link
4. Sivadon P, Barnier C, Urios L, Grimaud R. Biofilm formation as a microbial strategy to assimilate particulate substrates. Environ Microbiol Rep 2019; 11(6): 749-64. Link [DOI:10.1111/1758-2229.12785]
5. Archer NK, Mazaitis MJ, Costerton JW, Leid JG, Powers ME, Shirtliff ME. Staphylococcus aureus biofilms: properties, regulation, and roles in human disease. Virulence 2011; 2(5): 445-59. Link [DOI:10.4161/viru.2.5.17724]
6. Mahdavi M, Kasra Kermanshahi R., Jalali M. The assessment of disinfectants on various bacterial biofilms. Res J Uni Isfahan "Sci" 2008; 31(2): 35-46. Link
7. Poulsen LV. Microbial biofilm in food processing. LWT-Food Sci Technol 1999; 32(6): 321-6. Link [DOI:10.1006/fstl.1999.0561]
8. Shopsin B, Kreiswirth BN. Molecular epidemiology of methicillin-resistant Staphylococcus aureus. Emerg Infect Dis 2001 Mar;7(2):323. Link [DOI:10.3201/eid0702.010236]
9. Gladstar R. Rosemary gladstar's medicinal herbs: A beginner's guide: 33 healing herbs to know, grow, and use. USA: Storey Publishing: 2012 p. 50-212. Link
10. Panahi P, Jamzad Z, Pourmajidian M, Fallah A, Pourhashemi M, Sohrabi H. Taxonomic revision of the Quercus brantii complex (Fagaceae) in Iran with emphasis on leaf and pollen micromorphology. Acta Bot Hung 2012; 54(3-4): 355-75. Link [DOI:10.1556/ABot.54.2012.3-4.13]
11. Cunningham S. Cunningham's encyclopedia of magical herbs. USA: Llewellyn Worldwide: 1985. P. 25-67. Link
12. Nejad MS, Niroomand A. Carbohydrate content and its roles in alternate bearing in olive. Pak J Biol Sci 2007; 10(16): 2744-7. Link [DOI:10.3923/pjbs.2007.2744.2747]
13. Seyyednejad SM, Koochak H, Darabpour E, Motamedi H. A survey on Hibiscus rosa-sinensis, Alcea rosea L. and Malva neglecta Wallr as antibacterial agents. Asian Pac J Trop Dis 2010; 3(5): 351-5. Link [DOI:10.1016/S1995-7645(10)60085-5]
14. Fonseca AP, Extremina C, Fonseca AF, Sousa JC. Effect of subinhibitory concentration of piperacillin/tazobactam on Pseudomonas aeruginosa. J Med Microbiol 2004; 53(9): 903-10. Link [DOI:10.1099/jmm.0.45637-0]
15. Arciola CR, Campoccia D, Montanaro L. Implant infections: adhesion, biofilm formation and immune evasion. Nat Rev Microbiol 2018; 16(7): 397. Link [DOI:10.1038/s41579-018-0019-y]
16. Costerton JW, Montanaro L, Arciola CR. Biofilm in implant infections: its production and regulation. The Int Jo Art Org 2005; 28(11): 1062-8. Link [DOI:10.1177/039139880502801103]
17. Tande AJ, Patel R. Prosthetic joint infection. Clin Microbiol Rev 2014; 27(2): 302-45. Link [DOI:10.1128/CMR.00111-13]
18. Ebani VV. Biology and pathogenesis of Staphylococcus infection. Microorganisms 2020; 8(3): 383. Link [DOI:10.3390/microorganisms8030383]
19. Hoekstra J, Rutten VP, Lam TJ, Van Kessel KP, Spaninks MP, Stegeman JA, Benedictus L, Koop G. Activation of a bovine mammary epithelial cell Line by ruminant-associated Staphylococcus aureus is lineage dependent. Microorganisms. 2019; 7(12): 688. Link [DOI:10.3390/microorganisms7120688]
20. Hobby GH, Quave CL, Nelson K, Compadre CM, Beenken KE, Smeltzer MS. Quercus cerris extracts limit Staphylococcus aureus biofilm formation. J Ethnopharmacol 2012; 144(3): 812-5. Link [DOI:10.1016/j.jep.2012.10.042]
21. Shojaei Moghadam S, Maleki S, Darabpour E, Motamedi H, Nejad SM. Antibacterial activity of eight Iranian plant extracts against methicillin and cefixime restistant Staphylococcous aureus strains. Asian Pac J Trop Med 2010; 3(4): 262-5. Link [DOI:10.1016/S1995-7645(10)60063-6]
22. AL-Saadi ZN. Estimation of minimum inhibitory concentration (MIC) and minimum bactericidal concentration (MBC) of cell-free extracts of Bifidobacterium species against methicillin-resistant Staphylococcus aureus in vitro. AJBLS 2016; 4(5): 75-80. Link [DOI:10.11648/j.ajbls.20160405.12]
23. Sofy AR, Aboseidah AA, El-Morsi ES, Azmy HA, Hmed AA. Evaluation of antibacterial and antibiofilm activity of new antimicrobials as an urgent need to counteract stubborn multidrug-resistant bacteria. J Pure Appl Microbiol 2020; 14(1): 595-608. Link [DOI:10.22207/JPAM.14.1.62]
24. Mohsenipour Z, Hassanshahian M. Antibacterial activity of Espand (Peganum harmala) alcoholic extracts against six pathogenic bacteria in planktonic and biofilm forms. BJM 2016; 4(16): 109-120. Link [DOI:10.5812/jjm.34701]
25. Izadi Z, Mirazi N. Identification of chemical compounds and evaluation of antioxidant and antimicrobial properties of sage (Salvia officinalis L.) essential oil at different harvest times. Qom Univ Med Sci J. 2020; 14 (9): 1-15. Link [DOI:10.52547/qums.14.9.1]
26. Mendes FS, Garcia LM, da Silva Moraes T, Casemiro LA, de Alcântara CB, Ambrósio SR, Veneziani RC, Miranda ML, Martins CH. Antibacterial activity of salvia officinalis L. against periodontopathogens: An in vitro study. Anaerobe 2020; 20: 102194. Link [DOI:10.1016/j.anaerobe.2020.102194]
27. Bahar Z, Ghotaslou R, Taheri S. In vitro anti-biofilm activity of Quercus brantii subsp. persica on human pathogenic bacteria. Res J Pharmacogn 2017; 4(1): 67-73. Link
ارسال نظر درباره این مقاله : نام کاربری یا پست الکترونیک شما:
CAPTCHA
ارسال پیام به نویسنده مسئول

بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.

کلیه حقوق این وب سایت متعلق به مجله دانشگاه علوم پزشکی قم می باشد.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق
© 2025 CC BY-NC 4.0 | Qom University of Medical Sciences Journal

Designed & Developed by : Yektaweb