دوره 15، شماره 1 - ( فروردین 1400 )
جلد 15 شماره 1 صفحات 47-38 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Soleimani Mehranjani M, Delbari N, Ahmadi S. The Effects of Quercetin on the Tissue Quality and Function of Mouse Autotransplanted Ovary. Qom Univ Med Sci J 2021; 15 (1) :38-47
URL: http://journal.muq.ac.ir/article-1-3012-fa.html
URL: http://journal.muq.ac.ir/article-1-3012-fa.html
سلیمانی مهرنجانی ملک، دلبری نعیمه، احمدی سپیده. اثر کوئرستین بر کیفیت بافت و عملکرد تخمدان اتوگرفت موش. مجله دانشگاه علوم پزشکی قم. 1400; 15 (1) :38-47
1- گروه زیستشناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه اراک، اراک، ایران ، m-soleimani@araku.ac.ir
2- گروه زیستشناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه اراک، اراک، ایران
2- گروه زیستشناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه اراک، اراک، ایران
چکیده: (1497 مشاهده)
زمینه و هدف آسیب ایسکمی ریپرفیوژن و به دنبال آن تولید رادیکالهای آزاد اکسیژن و استرساکسیداتیو از محدودیتهای اصلی پیوند بافت تخمدان به شمار میروند. هدف بررسی اثر کوئرستین به عنوان یک آنتیاکسیدان بر کیفیت تخمدانهای اتوگرفت موش بود.
روش بررسی 36 موش ماده نژاد NMRI به سه گروه کنترل، اتوگرفت و اتوگرفت + کوئرستین (50 میلیگرم بر کیلوگرم در روز) تقسیم شدند. تیمار یک روز قبل تا هفت روز پس از پیوند انجام شد و 28 روز بعد، تخمدانها برای ارزیابیهای استریولوژیک خارج شدند. نمونههای سرمی در روزهای هفتم و بیستوهشتم بعد از پیوند برای اندازهگیری سطح مالون دیآلدئید، ظرفیت آنتیاکسیدانی کل، استرادیول و پروژسترون جمعآوری شدند. دادهها با استفاده از روش آنالیز واریانس یکطرفه و تست توکی و در سطح معنیداری 05/0>P تجزیه و تحلیل شد.
یافتهها میانگین حجم کل تخمدان، حجم کورتکس و حجم مدولا، میانگین تعداد انواع مختلف فولیکولها (001/P<0)، سطح استرادیول (05/P<0)، پروژسترون (001/P<0) و ظرفیت آنتیاکسیدانی کل (01/P<0) و میزان بازگشت سیکل استروس (001/P<0) در گروه اتوگرفت نسبت به گروه کنترل کاهش معناداری یافت؛ در حالی که پارامترهای ذکرشده در گروه اتوگرفت + کوئرستین نسبت به گروه اتوگرفت افزایش معنیداری یافتند (01/P<0). افزایش معنیداری در سطح مالون دیآلدئید در روزهای هفتم (001/P<0) و بیستوهشتم (01/P<0) پس از پیوند در گروه اتوگرفت نسبت به گروه کنترل مشاهده شد. این پارامتر در گروه اتوگرفت + کوئرستین، در حد گروه کنترل جبران شد.
نتیجهگیری نتایج این مطالعه نشان داد که کوئرستین میتواند کیفیت بافت و عملکرد تخمدانهای اتوگرفت موش را بهبود بخشد.
روش بررسی 36 موش ماده نژاد NMRI به سه گروه کنترل، اتوگرفت و اتوگرفت + کوئرستین (50 میلیگرم بر کیلوگرم در روز) تقسیم شدند. تیمار یک روز قبل تا هفت روز پس از پیوند انجام شد و 28 روز بعد، تخمدانها برای ارزیابیهای استریولوژیک خارج شدند. نمونههای سرمی در روزهای هفتم و بیستوهشتم بعد از پیوند برای اندازهگیری سطح مالون دیآلدئید، ظرفیت آنتیاکسیدانی کل، استرادیول و پروژسترون جمعآوری شدند. دادهها با استفاده از روش آنالیز واریانس یکطرفه و تست توکی و در سطح معنیداری 05/0>P تجزیه و تحلیل شد.
یافتهها میانگین حجم کل تخمدان، حجم کورتکس و حجم مدولا، میانگین تعداد انواع مختلف فولیکولها (001/P<0)، سطح استرادیول (05/P<0)، پروژسترون (001/P<0) و ظرفیت آنتیاکسیدانی کل (01/P<0) و میزان بازگشت سیکل استروس (001/P<0) در گروه اتوگرفت نسبت به گروه کنترل کاهش معناداری یافت؛ در حالی که پارامترهای ذکرشده در گروه اتوگرفت + کوئرستین نسبت به گروه اتوگرفت افزایش معنیداری یافتند (01/P<0). افزایش معنیداری در سطح مالون دیآلدئید در روزهای هفتم (001/P<0) و بیستوهشتم (01/P<0) پس از پیوند در گروه اتوگرفت نسبت به گروه کنترل مشاهده شد. این پارامتر در گروه اتوگرفت + کوئرستین، در حد گروه کنترل جبران شد.
نتیجهگیری نتایج این مطالعه نشان داد که کوئرستین میتواند کیفیت بافت و عملکرد تخمدانهای اتوگرفت موش را بهبود بخشد.
نوع مطالعه: مقاله پژوهشي |
موضوع مقاله:
بافت شناسی و جنین شناسی
دریافت: 1399/9/28 | پذیرش: 1399/12/28 | انتشار: 1400/1/10
دریافت: 1399/9/28 | پذیرش: 1399/12/28 | انتشار: 1400/1/10
فهرست منابع
1. Dath C, Van Eyck AS, Dolmans MM, Romeu L, Delle Vigne L, Donnez J, et al. Xenotransplantation of human ovarian tissue to nude mice: Comparison between four grafting sites. Hum Reprod. 2010; 25(7):1734-43. Link [DOI:10.1093/humrep/deq131] [PMID] [DOI:10.1093/humrep/deq131]
2. Kawamura K, Cheng Y, Sun YP, Zhai J, Diaz-Garcia C, Simon C, et al. Ovary transplantation: To activate or not to activate. Hum Reprod. 2015; 30(11):2457-60. [DOI:10.1093/humrep/dev211] [PMID] [DOI:10.1093/humrep/dev211]
3. Diaz-Garcia C, Domingo J, Garcia-Velasco JA, Herraiz S, Mirabet V, Iniesta I, et al. Oocyte vitrification versus ovarian cortex transplantation in fertility preservation for adult women undergoing gonadotoxic treatments: A prospective cohort study. Fertil Steril. 2018; 109(3):478-85. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2017.11.018] [PMID] [DOI:10.1016/j.fertnstert.2017.11.018]
4. Shiroma ME, Botelho NM, Damous LL, Baracat EC, Soares JM Jr. Melatonin influence in ovary transplantation: Systematic review. J Ovarian Res. 2016; 9(1):33. [DOI:10.1186/s13048-016-0245-8] [PMID] [PMCID] [DOI:10.1186/s13048-016-0245-8]
5. Juranek I, Bezek S. Controversy of free radical hypothesis: Reactive oxygen species-cause or consequence of tissue injury? Gen Physiol Biophys 2005; 24(3):263-78. [PMID]
6. Slegtenhorst BR, Dor FJ, Rodriguez H, Voskuil FJ, Tullius SG. Ischemia/reperfusion injury and its consequences on immunity and inflammation. Curr Transplant Rep. 2014; 1(3):147-54. [DOI:10.1007/s40472-014-0017-6] [PMID] [PMCID] [DOI:10.1007/s40472-014-0017-6]
7. Mahajan N. Fertility preservation in female cancer patients: An overview. J Hum Reprod Sci. 2015; 8(1):3-13. [DOI:10.4103/0974-1208.153119] [PMID] [PMCID] [DOI:10.4103/0974-1208.153119]
8. Aubard Y, Piver P, Cognie Y, Fermeaux V, Poulin N, Driancourt MA. Orthotopic and heterotopic autografts of frozen-thawed ovarian cortex in sheep. Hum Reprod. 1999; 14(8):2149-54. [DOI:10.1093/humrep/14.8.2149] [PMID] [DOI:10.1093/humrep/14.8.2149]
9. Ozkan OV, Yuzbasioglu MF, Ciralik H, Kurutas EB, Yonden Z, Aydin M, et al. Resveratrol, a natural antioxidant, attenuates intestinal ischemia/reperfusion injury in rats. Tohoku J Exp Med. 2009; 218(3):251-8. [DOI:10.1620/tjem.218.251] [PMID] [DOI:10.1620/tjem.218.251]
10. Nugent D, Newton H, Gallivan L, Gosden RG. Protective effect of vitamin E on ischaemia-reperfusion injury in ovarian grafts. J Reprod Fertil. 1998; 114(2):341-6. [DOI:10.1530/jrf.0.1140341] [PMID] [DOI:10.1530/jrf.0.1140341]
11. Atala E, Fuentes J, Wehrhahn MJ, Speisky H. Quercetin and related flavonoids conserve their antioxidant properties despite undergoing chemical or enzymatic oxidation. Food Chem. 2017; 234:479-85. [DOI:10.1016/j.foodchem.2017.05.023] [PMID] [DOI:10.1016/j.foodchem.2017.05.023]
12. Zizkova P, Stefek M, Rackova L, Prnova M, Horakova L. Novel quercetin derivatives: From redox properties to promising treatment of oxidative stress related diseases. Chem Biol Interact. 2017; 265:36-46. [DOI:10.1016/j.cbi.2017.01.019] [PMID] [DOI:10.1016/j.cbi.2017.01.019]
13. Anand David AV, Arulmoli R, Parasuraman S. Overviews of biological importance of quercetin: A bioactive flavonoid. Pharmacogn Rev. 2016; 10(20):84-9. [DOI:10.4103/0973-7847.194044] [PMID] [PMCID] [DOI:10.4103/0973-7847.194044]
14. Xu D, Hu MJ, Wang YQ, Cui YL. Antioxidant activities of quercetin and its complexes for medicinal application. Molecules. 2019; 24(6):1123. [DOI:10.3390/molecules24061123] [PMID] [PMCID] [DOI:10.3390/molecules24061123]
15. Gencer M, Karaca T, Güngör AN, Hacıvelioğlu SÖ, Demirtaş S, Turkon H, et al. The protective effect of quercetin on IMA levels and apoptosis in experimental ovarian ischemia-reperfusion injury. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 2014; 177:135-40. [DOI:10.1016/j.ejogrb.2014.03.036] [PMID] [DOI:10.1016/j.ejogrb.2014.03.036]
16. Wang J, Qian X, Gao Q, Lv C, Xu J, Jin H, et al. Quercetin increases the antioxidant capacity of the ovary in menopausal rats and in ovarian granulosa cell culture in vitro. J Ovarian Res. 2018; 11(1):51. [DOI:10.1186/s13048-018-0421-0] [PMID] [PMCID] [DOI:10.1186/s13048-018-0421-0]
17. Zohrabi D, Parivar K, Sanati MH, Hayati Roodbari N. [The effect of Quercetin on ovarian tissue of Female Wistar Rats treated with cyclophosphamide and growth indexes of their offspring (Persian)]. J Cell Tissue. 2017; 8(3):285-93. http://jct.araku.ac.ir/article_30363.html?lang=en
18. Shojafar E, Soleimani Mehranjani M, Shariatzadeh SMA. Adipose derived mesenchymal stem cells improve the structure and function of autografted mice ovaries through reducing oxidative stress and inflammation: A stereological and biochemical analysis. Tissue Cell. 2019; 56:23-30. [DOI:10.1016/j.tice.2018.11.005] [PMID] [DOI:10.1016/j.tice.2018.11.005]
19. Buege JA, Aust SD. Microsomal lipid peroxidation. Methods Enzymol. 1978; 52:302-10. [DOI:10.1016/S0076-6879(78)52032-6] [DOI:10.1016/S0076-6879(78)52032-6]
20. Benzie IF, Strain JJ. The Ferric Reducing Ability of Plasma (FRAP) as a measure of antioxidant power: The FRAP assay. Anal Biochem. 1996; 239(1):70-6. [DOI:10.1006/abio.1996.0292] [PMID] [DOI:10.1006/abio.1996.0292]
21. Mahmoodi M, Soleimani Mehranjani M, Shariatzadeh SM, Eimani H, Shahverdi A. N-acetylcysteine improves function and follicular survival in mice ovarian grafts through inhibition of oxidative stress. Reprod Biomed Online. 2015; 30(1):101-10. [DOI:10.1016/j.rbmo.2014.09.013] [PMID] [DOI:10.1016/j.rbmo.2014.09.013]
22. Shojafar E, Soleimani Mehranjani M, Shariatzadeh SMA. Adipose-derived mesenchymal stromal cell transplantation at the graft site improves the structure and function of autografted mice ovaries: A stereological and biochemical analysis. Cytotherapy. 2018; 20(11):1324-36. [DOI:10.1016/j.jcyt.2018.09.006] [PMID] [DOI:10.1016/j.jcyt.2018.09.006]
23. Amable PR, Teixeira MV, Carias RB, Granjeiro JM, Borojevic R. Mesenchymal stromal cell proliferation, gene expression and protein production in human platelet-rich plasma-supplemented media. PloS One. 2014; 9(8):e104662. [DOI:10.1371/journal.pone.0104662] [PMID] [PMCID] [DOI:10.1371/journal.pone.0104662]
24. Wong CH, Crack PJ. Modulation of neuro-inflammation and vascular response by oxidative stress following cerebral ischemia-reperfusion injury. Curr Med Chem. 2008; 15(1):1-4. [DOI:10.2174/092986708783330665] [PMID] [DOI:10.2174/092986708783330665]
25. Yilmaz G, Granger DN. Cell adhesion molecules and ischemic stroke. Neurol Res. 2008; 30(8):783-93. [DOI:10.1179/174313208X341085] [PMID] [PMCID] [DOI:10.1179/174313208X341085]
26. Gnoni GV, Paglialonga G, Siculella L. Quercetin inhibits fatty acid and triacylglycerol synthesis in rat‐liver cells. Eur J Clin Invest. 2009; 39(9):761-8. [DOI:10.1111/j.1365-2362.2009.02167.x] [PMID] [DOI:10.1111/j.1365-2362.2009.02167.x]
27. Zhou DS, Liang ZQ, Qin Q, Zhang MH, Li SL. [Therapeutic efficacy and mechanisms of quercetin in a rat model of nonalcoholic fatty liver disease (Chinese)]. Zhonghua Gan Zang Bing Za Zhi. 2013; 21(2):134-7. [PMID] [DOI:10.1111/j.1365-2362.2009.02167.x] [DOI:10.1111/j.1365-2362.2009.02167.x]
28. Li F, Tao Y, Zhang Y, Li Y, Fang F, Liu Y, et al. Follicle growth and oocyte development after ovary transplantation into back muscle of immune-intact adult castrated male mice. Reproduction. 2010; 140(3):465-76. [DOI:10.1530/REP-10-0076] [PMID] [DOI:10.1530/REP-10-0076]
29. Greenfeld CR, Babus JK, Furth PA, Marion S, Hoyer PB, Flaws JA. BAX is involved in regulating follicular growth, but is dispensable for follicle atresia in adult mouse ovaries. Reproduction. 2007; 133(1):107-16. [DOI:10.1530/REP-06-0144] [PMID] [DOI:10.1530/REP-06-0144]
30. Pourteymour Fard Tabrizi F, Hajizadeh-Sharafabad F, Vaezi M, Jafari-Vayghan H, Alizadeh M, Maleki V. Quercetin and polycystic ovary syndrome, current evidence and future directions: A systematic review. J Ovarian Res. 2020; 13(1):11. [DOI:10.1186/s13048-020-0616-z] [PMID] [PMCID] [DOI:10.1186/s13048-020-0616-z]
31. Slegtenhorst BR, Dor FJ, Rodriguez H, Voskuil FJ, Tullius SG. Ischemia/reperfusion injury and its consequences on immunity and inflammation. Curr Transplant Rep. 2014; 1(3):147-54. [DOI:10.1007/s40472-014-0017-6] [PMID] [PMCID] [DOI:10.1007/s40472-014-0017-6]
32. Rumley AG, Paterson JR. Analytical aspects of antioxidants and free radical activity in clinical biochemistry. Ann Clin Biochem. 1998; 35(Pt 2):181-200. [DOI:10.1177/000456329803500202] [PMID] [DOI:10.1177/000456329803500202]
33. Esterbauer H, Schaur RJ, Zollner H. Chemistry and biochemistry of 4-hydroxynonenal, malonaldehyde and related aldehydes. Free Radic Biol Med. 1991; 11(1):81-128. [DOI:10.1016/0891-5849(91)90192-6] [DOI:10.1016/0891-5849(91)90192-6]
34. Bryszewska M, Zavodnik IB, Niekurzak A, Szosland K. Oxidative processes in red blood cells from normal and diabetic individuals. Biochem Mol Biol Int. 1995; 37(2):345-54. [PMID]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
حق تالیف (کپی رایت) برای مولفان محفوظ است.
صاحب امتیاز: دانشگاه علوم پزشکی قم
ناشر: انتشارات دانشگاه علوم پزشکی قم
شاپا چاپی: 7799-1375
شاپا الکترونیک: 1375-2008
ایمیل مجله: journal@muq.ac.ir
j.muq.ac@gmail.com
