دوره 15، شماره 2 - ( اردیبهشت 1400 )
جلد 15 شماره 2 صفحات 119-110 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Abyari M, Alimohammadi S, Pooyanmehr M, Ghashghaii A, Maleki A. Assessment of the Effects of Cyclooxygenase Inhibitors on the Immune Status Following Surgery in Adult Male Rats. Qom Univ Med Sci J 2021; 15 (2) :110-119
URL: http://journal.muq.ac.ir/article-1-3124-fa.html
URL: http://journal.muq.ac.ir/article-1-3124-fa.html
آبیاری محمد، علی محمدی صمد، پویان مهر مهرداد، قشقایی علی، ملکی علی. ارزیابی اثرات مهارکننده های سیکلواکسیژناز بر وضعیت ایمنی به دنبال جراحی در رت های نر بالغ. مجله دانشگاه علوم پزشکی قم. 1400; 15 (2) :110-119
محمد آبیاری1 
، صمد علی محمدی* 2، مهرداد پویان مهر1 ، علی قشقایی1 ، علی ملکی3
، صمد علی محمدی* 2، مهرداد پویان مهر1 ، علی قشقایی1 ، علی ملکی3
1- دانشکده دامپزشکی، دانشگاه رازی،کرمانشاه، ایران.
2- دانشکده دامپزشکی، دانشگاه رازی،کرمانشاه، ایران. ،s.alimohammadi@razi.ac.ir
3- دانشگاه علوم پزشکی کرمانشاه
2- دانشکده دامپزشکی، دانشگاه رازی،کرمانشاه، ایران. ،
3- دانشگاه علوم پزشکی کرمانشاه
چکیده: (1609 مشاهده)
زمینه و هدف: جراحی بواسطه مکانیسم های مختلفی باعث تضعیف ایمنی در دوره بعد از عمل می شود. هدف از مطالعه حاضر بررسی اثرات تجویز قبل از جراحی مهارکننده های سیکلواکسیژناز بر سطوح خونی اینترلوکین-2 (IL-2)، اینترفرون گاما (IFN-γ)، فاکتور نکروز دهنده تومور-آلفا (TNF-α)، گلبول های سفید خون (WBCs) و لنفوسیت ها بود.
روش بررسی: 75 رت نر به پنج گروه 15 تایی تقسیم شدند. گروه 1 برای 3 روز بدون عمل جراحی با نرمال سالین گاواژ شد. گروه 2 برای 3 روز با نرمال سالین گاواژ شد. گروه های 5-3 به ترتیب با ایندومتاسین (4 میلیگرم بر کیلوگرم) و سلکوکسیب (5/7 و 15 میلیگرم بر کیلوگرم) برای 3 روز گاواژ شدند. در گروه های 5-2، یک ساعت پس از تجویز داروها در روز سوم، از لاپاراتومی به عنوان الگوی جراحی استفاده شد. 24 ساعت پس از جراحی، نمونه های خون جمع آوری و سطوح IL-2، IFN-γ، TNF-α، WBCs و لنفوسیت ها مشخص گردید. داده‌ها توسط آزمون واریانس یک‌طرفه آنالیز شدند.
یافته ها: 24 ساعت پس از جراحی، کاهش سطوح خونیIL-2 ، IFN-γ و لنفوسیت ها همراه با افزایش TNF-α و WBCs در مقایسه با رت های کنترل مشاهده شد (0/05>P). ایندومتاسین (4 میلیگرم بر کیلوگرم) و سلکوکسیب (15 میلیگرم بر کیلوگرم) سطح کاهش یافته IL-2 را افزایش دادند (0/05>P). تفاوت معناداری در IFN-γ و لنفوسیت ها بین گروه جراحی و گروه های درمانی با ایندومتاسین یا سلکوکسیب مشاهده نشد (0/05˃P). همچنین، فقط سلکوکسیب (15 میلیگرم بر کیلوگرم) توانست سطوح افزایش یافته TNF-α و WBCs را کاهش دهد (0/05>P).
نتیجه گیری: استفاده از مهارکننده های سیکلواکسیژناز قبل از جراحی می تواند عملکرد سیستم ایمنی را بهبود بخشد.
روش بررسی: 75 رت نر به پنج گروه 15 تایی تقسیم شدند. گروه 1 برای 3 روز بدون عمل جراحی با نرمال سالین گاواژ شد. گروه 2 برای 3 روز با نرمال سالین گاواژ شد. گروه های 5-3 به ترتیب با ایندومتاسین (4 میلیگرم بر کیلوگرم) و سلکوکسیب (5/7 و 15 میلیگرم بر کیلوگرم) برای 3 روز گاواژ شدند. در گروه های 5-2، یک ساعت پس از تجویز داروها در روز سوم، از لاپاراتومی به عنوان الگوی جراحی استفاده شد. 24 ساعت پس از جراحی، نمونه های خون جمع آوری و سطوح IL-2، IFN-γ، TNF-α، WBCs و لنفوسیت ها مشخص گردید. داده‌ها توسط آزمون واریانس یک‌طرفه آنالیز شدند.
یافته ها: 24 ساعت پس از جراحی، کاهش سطوح خونیIL-2 ، IFN-γ و لنفوسیت ها همراه با افزایش TNF-α و WBCs در مقایسه با رت های کنترل مشاهده شد (0/05>P). ایندومتاسین (4 میلیگرم بر کیلوگرم) و سلکوکسیب (15 میلیگرم بر کیلوگرم) سطح کاهش یافته IL-2 را افزایش دادند (0/05>P). تفاوت معناداری در IFN-γ و لنفوسیت ها بین گروه جراحی و گروه های درمانی با ایندومتاسین یا سلکوکسیب مشاهده نشد (0/05˃P). همچنین، فقط سلکوکسیب (15 میلیگرم بر کیلوگرم) توانست سطوح افزایش یافته TNF-α و WBCs را کاهش دهد (0/05>P).
نتیجه گیری: استفاده از مهارکننده های سیکلواکسیژناز قبل از جراحی می تواند عملکرد سیستم ایمنی را بهبود بخشد.
واژه‌های کلیدی: سیستم ایمنی، مهارکننده های سیکلواکسیژناز، جراحی، رت
نوع مطالعه: مقاله پژوهشي |
موضوع مقاله:
فیزیولوژی
دریافت: 1400/2/12 | پذیرش: 1400/2/26 | انتشار: 1400/1/30
دریافت: 1400/2/12 | پذیرش: 1400/2/26 | انتشار: 1400/1/30
فهرست منابع
1. Choy MC, Visvanathan K, De Cruz P. An overview of the innate and adaptive immune system in inflammatory bowel disease. Inflamm Bowel Dis. 2017; 23(1):2-13. [DOI:10.1097/MIB.0000000000000955] [PMID] [DOI:10.1097/MIB.0000000000000955]
2. Hari MS, Summers C. Major surgery and the immune system: from pathophysiology to treatment. Curr Opin Crit Care. 2018; 24(6):588-93. [DOI:10.1097/MCC.0000000000000561] [PMID] [DOI:10.1097/MCC.0000000000000561]
3. Hogan BV, Peter MB, Shenoy HG, Horgan K, Hughes TA. Surgery induced immunosuppression. Surgeon. 2011; 9(1):38-43. [DOI:10.1016/j.surge.2010.07.011] [PMID] [DOI:10.1016/j.surge.2010.07.011]
4. Roxo AC, Del Pino Roxo C, Marques RG, Rodrigues NCP, Carneiro DV, Souto FMDC, et al. Endocrine-metabolic response in patients undergoing multiple body contouring surgeries after massive weight loss. Aesthet Surg J. 2019; 39(7):756-64. [DOI:10.1093/asj/sjy195] [PMID] [DOI:10.1093/asj/sjy195]
5. Tian XS, Tong YW, Li ZQ, Li LX, Zhang T, Ren TY, et al. Surgical stress induces brain-derived neurotrophic factor reduction and postoperative cognitive dysfunction via glucocorticoid receptor phosphorylation in aged mice. CNS Neurosci Ther. 2015; 21(5):398-409. [DOI:10.1111/cns.12368] [PMID] [PMCID] [DOI:10.1111/cns.12368]
6. Coutinho AE, Chapman KE. The anti-inflammatory and immunosuppressive effects of glucocorticoids, recent developments and mechanistic insights. Mol Cell Endocrinol. 2011; 335(1):2-13. [DOI:10.1016/j.mce.2010.04.005] [PMID] [PMCID] [DOI:10.1016/j.mce.2010.04.005]
7. Prenek L, Litvai T, Balázs N, Kugyelka R, Boldizsár F, Najbauer J, et al. Regulatory T cells are less sensitive to glucocorticoid hormone induced apoptosis than CD4+ T cells. Apoptosis. 2020; 25(9-10):715-29. [DOI:10.1007/s10495-020-01629-x] [PMID] [PMCID] [DOI:10.1007/s10495-020-01629-x]
8. Neeman E, Zmora O, Ben-Eliyahu S. A new approach to reducing postsurgical cancer recurrence: perioperative targeting of catecholamines and prostaglandins. Clin Cancer Res. 2012; 18(18):4895-902. [DOI:10.1158/1078-0432.CCR-12-1087] [PMID] [PMCID] [DOI:10.1158/1078-0432.CCR-12-1087]
9. Elenkov IJ, Wilder RL, Chrousos GP, Vizi ES. The sympathetic nerve-an integrative interface between two supersystems: the brain and the immune system. Pharmacol Rev. 2000; 52(4):595-638. [PMID]
10. Seth R, Tai LH, Falls T, de Souza CT, Bell JC, Carrier M, et al. Surgical stress promotes the development of cancer metastases by a coagulation-dependent mechanism involving natural killer cells in a murine model. Ann Surg. 2013; 258(1):158-68. [DOI:10.1097/SLA.0b013e31826fcbdb] [PMID] [DOI:10.1097/SLA.0b013e31826fcbdb]
11. Kawashima M, Ogura N, Akutsu M, Ito K, Kondoh T. The anti‐inflammatory effect of cyclooxygenase inhibitors in fibroblast‐like synoviocytes from the human temporomandibular joint results from the suppression of PGE2 production. J Oral Pathol Med. 2013; 42(6):499-506. [DOI:10.1111/jop.12045] [PMID] [PMCID] [DOI:10.1111/jop.12045]
12. Li T, Zhang Q, Jiang Y, Yu J, Hu Y, Mou T, et al. Gastric cancer cells inhibit natural killer cell proliferation and induce apoptosis via prostaglandin E2. Oncoimmunology. 2016; 5(2):e1069936. [DOI:10.1080/2162402X.2015.1069936] [PMID] [PMCID] [DOI:10.1080/2162402X.2015.1069936]
13. Wang D, DuBois RN. The role of prostaglandin E2 in tumor-associated immunosuppression. Trends Mol Med. 2016; 22(1):1-3. [DOI:10.1016/j.molmed.2015.11.003] [PMID] [PMCID] [DOI:10.1016/j.molmed.2015.11.003]
14. Yakar I, Melamed R, Shakhar G, Shakhar K, Rosenne E, Abudarham N, et al. Prostaglandin E2 suppresses NK activity in vivo and promotes postoperative tumor metastasis in rats. Ann Surg Oncol. 2003; 10(4):469-79. [DOI:10.1245/ASO.2003.08.017] [PMID] [DOI:10.1245/ASO.2003.08.017]
15. Khayyal MT, El-Ghazaly MA, El-Hazek RM, Nada AS. The effects of celecoxib, a COX-2 selective inhibitor, on acute inflammation induced in irradiated rats. Inflammopharmacology. 2009; 17(5):255-66. [DOI:10.1007/s10787-009-0014-z] [PMID] [DOI:10.1007/s10787-009-0014-z]
16. Banti CN, Hadjikakou SK. Non‐steroidal anti‐inflammatory drugs (NSAIDs) in metal complexes and their effect at the cellular level. Eur J Inorg Chem. 2016; 2016(19):3048-71. [DOI:10.1002/ejic.201501480] [DOI:10.1002/ejic.201501480]
17. Liao W, Lin JX, Leonard WJ. Interleukin-2 at the crossroads of effector responses, tolerance, and immunotherapy. Immunity. 2013; 38:13-25. [DOI:10.1016/j.immuni.2013.01.004] [PMID] [PMCID] [DOI:10.1016/j.immuni.2013.01.004]
18. Zaidi MR, Merlino G. The two faces of interferon-γ in cancer. Clin Cancer Res. 2011; 17(19):6118-24. [DOI:10.1158/1078-0432.CCR-11-0482] [PMID] [PMCID] [DOI:10.1158/1078-0432.CCR-11-0482]
19. Terrando N, Monaco C, Ma D, Foxwell BM, Feldmann M, Maze M. Tumor necrosis factor-α triggers a cytokine cascade yielding postoperative cognitive decline. Proc Natl Acad Sci USA. 2010; 107(47):20518-22. [DOI:10.1073/pnas.1014557107] [PMID] [PMCID] [DOI:10.1073/pnas.1014557107]
20. Inada T, Asai T, Yamada M, Shingu K. Propofol and midazolam inhibit gastric emptying and gastrointestinal transit in mice. Anesth Analg. 2004; 99(4):1102-6. [DOI:10.1213/01.ANE.0000130852.53082.D5] [PMID] [DOI:10.1213/01.ANE.0000130852.53082.D5]
21. Benish M, Bartal I, Goldfarb Y, Levi B, Avraham R, Raz A, et al. Perioperative use of β-blockers and COX-2 inhibitors may improve immune competence and reduce the risk of tumor metastasis. Ann Surg Oncol. 2008; 15(7):2042-52. [DOI:10.1245/s10434-008-9890-5] [PMID] [PMCID] [DOI:10.1245/s10434-008-9890-5]
22. Galluzzi L, Yamazaki T, Kroemer G. Linking cellular stress responses to systemic homeostasis. Nat Rev Mol Cell Biol. 2018; 19(11):731-45. [DOI:10.1038/s41580-018-0068-0] [PMID] [DOI:10.1038/s41580-018-0068-0]
23. Iwasaki M, Edmondson M, Sakamoto A, Ma D. Anesthesia, surgical stress, and "long-term" outcomes. Acta Anaesthesiol Taiwan. 2015; 53(3):99-104. [DOI:10.1016/j.aat.2015.07.002] [PMID] [DOI:10.1016/j.aat.2015.07.002]
24. Dąbrowska AM, Słotwiński R. The immune response to surgery and infection. Cent Eur J Immunol. 2014; 39(4):532-7. [DOI:10.5114/ceji.2014.47741] [PMID] [PMCID] [DOI:10.5114/ceji.2014.47741]
25. Hahn T, Alvarez I, Kobie JJ, Ramanathapuram L, Dial S, Fulton A, et al. Short‐term dietary administration of celecoxib enhances the efficacy of tumor lysate‐pulsed dendritic cell vaccines in treating murine breast cancer. Int J Cancer. 2006; 118(9):2220-31. [DOI:10.1002/ijc.21616] [PMID] [DOI:10.1002/ijc.21616]
26. Vuilleumier PH, Schliessbach J, Curatolo M. Current evidence for central analgesic effects of NSAIDs: an overview of the literature. Minerva Anestesiol. 2018; 84(7):865-70. [DOI:10.23736/S0375-9393.18.12607-1] [PMID] [DOI:10.23736/S0375-9393.18.12607-1]
27. Ikegami R, Sugimoto Y, Segi E, Katsuyama M, Karahashi H, Amano F, et al. The expression of prostaglandin E receptors EP2 and EP4 and their different regulation by lipopolysaccharide in C3H/HeN peritoneal macrophages. J Immunol. 2001; 166(7):4689-96. [DOI:10.4049/jimmunol.166.7.4689] [PMID] [DOI:10.4049/jimmunol.166.7.4689]
28. Harizi H, Juzan M, Grosset C, Rashedi M, Gualde N. Dendritic cells issued in vitro from bone marrow produce PGE2 that contributes to the immunomodulation induced by antigen-presenting cells. Cell Immunol. 2001; 209(1):19-28. [DOI:10.1006/cimm.2001.1785] [PMID] [DOI:10.1006/cimm.2001.1785]
29. Liao W, Lin JX, Leonard WJ. IL-2 family cytokines: new insights into the complex roles of IL-2 as a broad regulator of T helper cell differentiation. Curr Opin Immunol. 2011; 23(5):598-604. [DOI:10.1016/j.coi.2011.08.003] [PMID] [PMCID] [DOI:10.1016/j.coi.2011.08.003]
30. Faist E, Mewes A, Baker CC, Strasser T, Alkan SS, Rieber P, et al. Prostaglandin E2 (PGE2)-dependent suppression of interleukin alpha (IL-2) production in patients with major trauma. J Trauma. 1987; 27(8):837-48. [DOI:10.1097/00005373-198708000-00001] [PMID] [DOI:10.1097/00005373-198708000-00001]
31. Bao YS, Zhang P, Xie RJ, Wang M, Wang ZY, Zhou Z, et al. The regulation of CD4+ T cell immune responses toward Th2 cell development by prostaglandin E2. Int Immunopharmacol. 2011; 11(10):1599-605. [DOI:10.1016/j.intimp.2011.05.021] [PMID] [DOI:10.1016/j.intimp.2011.05.021]
32. Walker W, Rotondo D. Prostaglandin E2 is a potent regulator of interleukin‐12‐and interleukin‐18‐induced natural killer cell interferon‐γ synthesis. Immunology. 2004; 111(3):298-305. [DOI:10.1111/j.1365-2567.2004.01810.x] [PMID] [PMCID] [DOI:10.1111/j.1365-2567.2004.01810.x]
33. Brogliato AR, Antunes CA, Carvalho RS, Monteiro AP, Tinoco RF, Bozza MT, et al. Ketoprofen impairs immunosuppression induced by severe sepsis and reveals an important role for prostaglandin E2. Shock. 2012; 38(6):620-9. [DOI:10.1097/SHK.0b013e318272ff8a] [PMID] [DOI:10.1097/SHK.0b013e318272ff8a]
34. Toft P, Lillevang ST, Tønnesen E, Svendsen P, Höhndorf K. Redistribution of lymphocytes following E. coli sepsis. Scand J Immunol. 1993; 38(6):541-5. [DOI:10.1111/j.1365-3083.1993.tb03238.x] [PMID] [DOI:10.1111/j.1365-3083.1993.tb03238.x]
35. Chouaib S, Welte K, Mertelsmann R, Dupont B. Prostaglandin E2 acts at two distinct pathways of T lymphocyte activation: inhibition of interleukin 2 production and down-regulation of transferrin receptor expression. J Immunol. 1985; 135(2):1172-9. [PMID]
36. Grzelak I, Olszewski WL, Engeset A. Suppressor cell activity in peripheral blood in cancer patients after surgery. Clin Exp Immunol. 1983; 51(1):149-56. [PMCID]
37. Hong JY. The effect of preoperative ketorolac on WBC response and pain in laparoscopic surgery for endometriosis. Yonsei Med J. 2005; 46(6):812-7. [DOI:10.3349/ymj.2005.46.6.812] [PMID] [PMCID] [DOI:10.3349/ymj.2005.46.6.812]
38. Parameswaran N, Patial S. Tumor necrosis factor-α signaling in macrophages. Crit Rev Eukaryot Gene Expr. 2010; 20(2):87-103. [DOI:10.1615/CritRevEukarGeneExpr.v20.i2.10] [PMID] [PMCID] [DOI:10.1615/CritRevEukarGeneExpr.v20.i2.10]
39. Feldmann M, Brennan FM, Elliott M, Katsikis P, Maini RN. TNF alpha as a therapeutic target in rheumatoid arthritis. Circ Shock. 1994; 43(4):179-84. [PMID]
40. Grijalva CG, Chen L, Delzell E, Baddley JW, Beukelman T, Winthrop KL, et al. Initiation of tumor necrosis factor-α antagonists and the risk of hospitalization for infection in patients with autoimmune diseases. Jama. 2011; 306(21):2331-9. [DOI:10.1001/jama.2011.1692] [PMID] [PMCID] [DOI:10.1001/jama.2011.1692]
41. Ma Y, Cheng Q, Wang E, Li L, Zhang X. Inhibiting tumor necrosis factor α signaling attenuates postoperative cognitive dysfunction in aged rats. Mol Med Rep. 2015; 12(2):3095-100. [DOI:10.3892/mmr.2015.3744] [PMID] [DOI:10.3892/mmr.2015.3744]
42. Baxevanis CN, Papilas K, Dedoussis GV, Pavlis T, Papamichail M. Abnormal cytokine serum levels correlate with impaired cellular immune responses after surgery. Clin Immunol Immunopathol. 1994; 71(1):82-8. [DOI:10.1006/clin.1994.1055] [PMID] [DOI:10.1006/clin.1994.1055]
43. Shinomiya S, Naraba H, Ueno A, Utsunomiya I, Maruyama T, Ohuchida S, et al. Regulation of TNF-α and interleukin-10 production by prostaglandins I2 and E2: Studies with prostaglandin receptor-deficient mice and prostaglandin E-receptor subtype-selective synthetic agonists. Biochem Pharmacol. 2001; 61(9):1153-60. [DOI:10.1016/S0006-2952(01)00586-X] [DOI:10.1016/S0006-2952(01)00586-X]
44. Renz HA, Gong JH, Schmidt AN, Nain MA, Gemsa DI. Release of tumor necrosis factor-alpha from macrophages. Enhancement and suppression are dose-dependently regulated by prostaglandin E2 and cyclic nucleotides. J Immunol. 1988; 141(7):2388-93. [PMID]
45. Fuccelli R, Fabiani R, Sepporta MV, Rosignoli P. The hydroxytyrosol-dependent increase of TNF-α in LPS-activated human monocytes is mediated by PGE2 and adenylate cyclase activation. Toxicol In Vitro. 2015; 29(5):933-7. [DOI:10.1016/j.tiv.2015.03.022] [PMID] [DOI:10.1016/j.tiv.2015.03.022]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
حق تالیف (کپی رایت) برای مولفان محفوظ است.
صاحب امتیاز: دانشگاه علوم پزشکی قم
ناشر: انتشارات دانشگاه علوم پزشکی قم
شاپا چاپی: 7799-1375
شاپا الکترونیک: 1375-2008
ایمیل مجله: journal@muq.ac.ir
j.muq.ac@gmail.com
