جلد 18 -
جلد 18 - صفحات 0-0 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Ethics code: IR.IAU.VARAMIN.REC.1399.002
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Shahriary S, Tafvizi F, Khodarahmi P, Shaabanzadeh M. Cytotoxicity Effect of Artemisia deserti Aqueous Leaf Extract on Cisplatin-Resistant Ovarian Cancer Cell Line (A2780-CP). Qom Univ Med Sci J 2024; 18 : 913.3
URL: http://journal.muq.ac.ir/article-1-3768-fa.html
URL: http://journal.muq.ac.ir/article-1-3768-fa.html
شهریاری سپیده، تفویضی فرزانه، خدارحمی پروین، شعبانزاده مسعود. اثر سمیت سلولی عصاره آبی گیاه درمنه بیابانی بر سلولهای سرطان تخمدان مقاوم به سیسپلاتین A2780-CP در شرایط آزمایشگاهی. مجله دانشگاه علوم پزشکی قم. 1403; 18 ()
سپیده شهریاری1 
، فرزانه تفویضی* 2، پروین خدارحمی1 ، مسعود شعبانزاده3
، فرزانه تفویضی* 2، پروین خدارحمی1 ، مسعود شعبانزاده3
1- گروه زیستشناسی، دانشکده علوم پایه، واحد پرند، دانشگاه آزاد اسلامی، پرند، ایران.
2- گروه زیستشناسی، دانشکده علوم پایه، واحد پرند، دانشگاه آزاد اسلامی، پرند، ایران. ،farzanehtafvizi54@gmail.com
3- گروه شیمی، دانشکده علوم پایه، واحد دامغان، دانشگاه آزاد اسلامی، دامغان، ایران.
2- گروه زیستشناسی، دانشکده علوم پایه، واحد پرند، دانشگاه آزاد اسلامی، پرند، ایران. ،
3- گروه شیمی، دانشکده علوم پایه، واحد دامغان، دانشگاه آزاد اسلامی، دامغان، ایران.
چکیده: (455 مشاهده)
زمینه و هدف: عوارض درمانهای رایج سرطان موجب طراحی مطالعات متعدد بهمنظور یافتن عوامل دارویی ضدسرطان با منشأ طبیعی ازجمله گیاهان شده است. مواد مشتق از گیاهان با خاصیت دارویی شامل ترکیباتی ازجمله ترپنوئیدها هستند که توانایی ایجاد تغییر در روند نرمال رشد سلول را دارند. در این مطالعه، تأثیر کشندگی عصاره آبی برگ گیاه درمنه بیابانی بر روی رده سلولی سرطان تخمدان مقاوم به سیسپلاتین A2780-CP بررسی شد.
روش بررسی: ابتدا عصاره آبی برگ گیاه درمنه بیابانی تهیه شد. رده سلولی A2780-CP با غلظت 100 تا 6/25 میکروگرم در میلیلیتر عصاره تیمار شد و آزمون MTT صورت گرفت. تغییر مقدار گونههای فعال اکسیژن درونسلولی با آزمون DCF، القای آپوپتوز و اختلال در چرخه رشد سلولهای موردمطالعه در مقایسه با سلولهای کنترل با رنگآمیزی انکسین/یدید پروپیدیوم، همچنین بیان ژنهای آپوپتوتیک BCL2، BAX، CASP3، CASP9 و P21، چرخه سلول CCNB1 و CCND1 و ژن TFRC با تکنیک qRT PCR متعاقب تیمار سلولها با غلظت IC50 عصاره بررسی شدند. آنالیز واریانس یکطرفه و فرمول 2-∆∆Ct در تحلیل آماری استفاده شد.
یافتهها: در این مطالعه، سمیت وابسته به دُز عصاره آبی گیاه درمنه بیابانی بر روی رده سلولی A2780-CP، باعث افزایش معنیدار مقدار گونههای فعال اکسیژن درونسلولی و تفاوت معنیدار در بیان ژنهای مرتبط با آپوپتوز و چرخه رشد سلول شد.
نتیجهگیری: یافتههای مذکور، عصاره آبی برگ گیاه درمنه بیابانی را انتخاب مناسبی جهت جلوگیری از تکثیر رده سلولی A2780-CP، در شرایط آزمایشگاهی و برای مطالعات بیشتر در این زمینه پیشنهاد میکند.
روش بررسی: ابتدا عصاره آبی برگ گیاه درمنه بیابانی تهیه شد. رده سلولی A2780-CP با غلظت 100 تا 6/25 میکروگرم در میلیلیتر عصاره تیمار شد و آزمون MTT صورت گرفت. تغییر مقدار گونههای فعال اکسیژن درونسلولی با آزمون DCF، القای آپوپتوز و اختلال در چرخه رشد سلولهای موردمطالعه در مقایسه با سلولهای کنترل با رنگآمیزی انکسین/یدید پروپیدیوم، همچنین بیان ژنهای آپوپتوتیک BCL2، BAX، CASP3، CASP9 و P21، چرخه سلول CCNB1 و CCND1 و ژن TFRC با تکنیک qRT PCR متعاقب تیمار سلولها با غلظت IC50 عصاره بررسی شدند. آنالیز واریانس یکطرفه و فرمول 2-∆∆Ct در تحلیل آماری استفاده شد.
یافتهها: در این مطالعه، سمیت وابسته به دُز عصاره آبی گیاه درمنه بیابانی بر روی رده سلولی A2780-CP، باعث افزایش معنیدار مقدار گونههای فعال اکسیژن درونسلولی و تفاوت معنیدار در بیان ژنهای مرتبط با آپوپتوز و چرخه رشد سلول شد.
نتیجهگیری: یافتههای مذکور، عصاره آبی برگ گیاه درمنه بیابانی را انتخاب مناسبی جهت جلوگیری از تکثیر رده سلولی A2780-CP، در شرایط آزمایشگاهی و برای مطالعات بیشتر در این زمینه پیشنهاد میکند.
شمارهی مقاله: 913.3
واژههای کلیدی: گیاه درمنه بیابانی، آپوپتوز، سرطان تخمدان، مقاومت به سیسپلاتین، سمیت سلولی، گونههای فعال اکسیژن
نوع مطالعه: مقاله پژوهشي |
موضوع مقاله:
سلولی و مولکولی
دریافت: 1402/4/12 | پذیرش: 1402/5/29 | انتشار: 1403/2/10
دریافت: 1402/4/12 | پذیرش: 1402/5/29 | انتشار: 1403/2/10
فهرست منابع
1. Tran S, DeGiovanni PJ, Piel B, Rai P. Cancer nanomedicine: A review of recent success in drug delivery. Clin Transl Med. 2017; 6(1):44. [DOI:10.1186/s40169-017-0175-0] [PMID] [DOI:10.1186/s40169-017-0175-0]
2. Stewart C, Ralyea C, Lockwood S. Ovarian cancer: An integrated review. Semin Oncol Nurs. 2019; 35(2):151-6. [DOI:10.1016/j.soncn.2019.02.001] [PMID] [DOI:10.1016/j.soncn.2019.02.001]
3. Rezapour A, Nargesi S, Mezginejad F, Rashki Kemmak A, Bagherzadeh R. The economic burden of cancer in Iran during 1995-2019: A systematic review. Iran J Public Health. 2020; 50(1):35-45. [DOI:10.18502/ijph.v50i1.5070] [DOI:10.18502/ijph.v50i1.5070]
4. Siddik ZH. Cisplatin resistance: Molecular basis of multifaceted impediment. In: Teicher BA, editor. Cancer drug discovery and development. New Jersey: Humana Press; 2006. [Link]
5. De Luca A, Parker LJ, Ang WH, Rodolfo C, Gabbarini V, Hancock NC, et al. A structure-based mechanism of cisplatin resistance mediated by glutathione transferase P1-1. Proc Natl Acad Sci U S A. 2019; 116(28):13943-51. [DOI:10.1073/pnas.1903297116] [PMID] [DOI:10.1073/pnas.1903297116]
6. Shen DW, Pouliot LM, Hall MD, Gottesman MM. Cisplatin resistance: A cellular self-defense mechanism resulting from multiple epigenetic and genetic changes. Pharmacol Rev. 2012; 64(3):706-21. [DOI:10.1124/pr.111.005637] [PMID] [DOI:10.1124/pr.111.005637]
7. Zhang Y, Wang X, Han L, Zhou Y, Sun S. Green tea polyphenol EGCG reverse cisplatin resistance of A549/DDP cell line through candidate genes demethylation. Biomed Pharmacother. 2015; 69:285-90. [DOI:10.1016/j.biopha.2014.12.016] [PMID] [DOI:10.1016/j.biopha.2014.12.016]
8. Kartalou M, Essigmann JM. Mechanisms of resistance to cisplatin. Mutat Res. 2001; 478(1-2):23-43. [DOI:10.1016/S0027-5107(01)00141-5] [PMID] [DOI:10.1016/S0027-5107(01)00141-5]
9. Ebrahiminezhad A, Zare-Hoseinabadi A, Sarmah AK, Taghizadeh S, Ghasemi Y, Berenjian A. Plant-mediated synthesis and applications of Iron nanoparticles. Mol Biotechnol. 2018; 60(2):154-68. [DOI:10.1007/s12033-017-0053-4] [PMID] [DOI:10.1007/s12033-017-0053-4]
10. Udalamaththa VL, Jayasinghe CD, Udagama PV. Potential role of herbal remedies in stem cell therapy: Proliferation and differentiation of human mesenchymal stromal cells. Stem Cell Res Ther. 2016; 7(1):110. [DOI:10.1186/s13287-016-0366-4] [PMID] [DOI:10.1186/s13287-016-0366-4]
11. Rivera JO, Loya AM, Ceballos R. Use of herbal medicines and implications for conventional drug therapy medical sciences. Altern Integr Med. 2013; 2:130. [Link] [DOI:10.4172/2327-5162.1000130]
12. Konkimalla VB, Efferth T. Evidence-based Chinese medicine for cancer therapy. J Ethnopharmacol. 2008; 116(2):207-10. [DOI:10.1016/j.jep.2007.12.009] [PMID] [DOI:10.1016/j.jep.2007.12.009]
13. Kooti W, Servatyari K, Behzadifar M, Asadi-Samani M, Sadeghi F, Nouri B, et al. Effective medicinal plant in cancer treatment, Part 2: Review study. J Evid Based Complementary Altern Med. 2017; 22(4):982-95. [DOI:10.1177/2156587217696927] [PMID] [DOI:10.1177/2156587217696927]
14. Luo H, Vong CT, Chen H, Gao Y, Lyu P, Qiu L, et al. Naturally occurring anti-cancer compounds: Shining from Chinese herbal medicine. Chin Med. 2019; 14:48. [DOI:10.1186/s13020-019-0270-9] [PMID] [DOI:10.1186/s13020-019-0270-9]
15. Safarzadeh E, Sandoghchian Shotorbani S, Baradaran B. Herbal medicine as inducers of apoptosis in cancer treatment. Adv Pharm Bull. 2014; 4(Suppl 1):421-7. [DOI:10.5681%2Fapb.2014.062] [PMID]
16. Bezabeh T, Mowat MR, Jarolim L, Greenberg AH, Smith IC. Detection of drug-induced apoptosis and necrosis in human cervical carcinoma cells using 1H NMR spectroscopy. Cell Death Differ. 2001; 8(3):219-24. [DOI:10.1038/sj.cdd.4400802] [PMID] [DOI:10.1038/sj.cdd.4400802]
17. Numonov S, Sharopov F, Salimov A, Sukhrobov P, Atolikshoeva S, Safarzoda R, et al. Assessment of artemisinin contents in selected artemisia species from Tajikistan (Central Asia). Medicines (Basel). 2019; 6(1):23. [DOI:10.3390%2Fmedicines6010023] [PMID] [DOI:10.3390/medicines6010023]
18. Efferth T. From ancient herb to modern drug: Artemisia annua and artemisinin for cancer therapy. Semin Cancer Biol. 2017; 46:65-83. [DOI:10.1016/j.semcancer.2017.02.009] [PMID] [DOI:10.1016/j.semcancer.2017.02.009]
19. Konstat-Korzenny E, Ascencio-Aragón JA, Niezen-Lugo S, Vázquez-López R. Artemisinin and its synthetic derivatives as a possible therapy for cancer. Med Sci (Basel). 2018; 6(1):19. [DOI:10.3390%2Fmedsci6010019] [PMID] [DOI:10.3390/medsci6010019]
20. Hajdú Z, Hohmann J, Forgo P, Máthé I, Molnár J, Zupkó I. Antiproliferative activity of artemisia asiatica extract and its constituents on human tumor cell lines. Planta Med. 2014; 80(18):1692-7. [DOI:10.1055/s-0034-1383146] [PMID] [DOI:10.1055/s-0034-1383146]
21. Taghizadeh Rabe SZ, Mahmoudi M, Ahi A, Emami SA. Antiproliferative effects of extracts from Iranian artemisia species on cancer cell lines. Pharm Biol. 2011; 49(9):962-9. [DOI:10.3109/13880209.2011.559251] [PMID] [DOI:10.3109/13880209.2011.559251]
22. Haghighi SM, Tafvizi F, Mirzaie A. Encapsulation of Artemisia scoparia extract in chitosan-myristate nanogel with enhanced cytotoxicity and apoptosis against hepatocellular carcinoma cell line (Huh-7). Ind Crops Prod. 2020; 155(1):112790. [DOI:10.1016/j.indcrop.2020.112790] [DOI:10.1016/j.indcrop.2020.112790]
23. Aslantürk ÖS. In Vitro cytotoxicity and cell viability assays: Principles, advantages, and disadvantages [Internet]. Genotoxicity - A predictable risk to our actual world. London: InTech; 2018. [DOI:10.5772/intechopen.71923] [DOI:10.5772/intechopen.71923]
24. Roesslein M, Hirsch C, Kaiser JP, Krug HF, Wick P. Comparability of in vitro tests for bioactive nanoparticles: A common assay to detect reactive oxygen species as an example. Int J Mol Sci. 2013; 14(12):24320-37. [DOI:10.3390%2Fijms141224320] [PMID] [DOI:10.3390/ijms141224320]
25. Shulaev V, Oliver DJ. Metabolic and proteomic markers for oxidative stress. New tools for reactive oxygen species research. Plant Physiol. 2006; 141(2):367-72. [DOI:10.1104/pp.106.077925] [PMID] [DOI:10.1104/pp.106.077925]
26. Crowley LC, Marfell BJ, Scott AP, Waterhouse NJ. Quantitation of apoptosis and necrosis by annexin V binding, propidium iodide uptake, and flow cytometry. Cold Spring Harb Protoc. 2016; 2016(11). [DOI:10.1101/pdb.prot087288] [PMID] [DOI:10.1101/pdb.prot087288]
27. Mohammadi Shivyari A, Tafvizi F, Noorbazargan H. Anti-cancer effects of biosynthesized zinc oxide nanoparticles using Artemisia scoparia in Huh-7 liver cancer cells. Inorg Nano-Metal Chem. 2022; 52(3):375-86. [DOI:10.1080/24701556.2021.1980018]
28. Aslany S, Tafvizi F, Naseh V. Characterization and evaluation of cytotoxic and apoptotic effects of green synthesis of silver nanoparticles using artemisia ciniformis on human gastric adenocarcinoma. Mater Today Commun. 2020; 24:101011. [DOI:10.1016/j.mtcomm.2020.101011] [DOI:10.1016/j.mtcomm.2020.101011]
29. Shahriary S, Tafvizi F, Khodarahmi P, Shaabanzadeh M. Phyto-mediated synthesis of CuO nanoparticles using aqueous leaf extract of artemisia deserti and their anticancer effects on A2780-CP cisplatin-resistant ovarian cancer cells. Biomass Convers Biorefinery. 2024; 14(2):2263-79.[DOI:10.1007/s13399-022-02436-x] [DOI:10.1007/s13399-022-02436-x]
30. Fard SE, Tafvizi F, Torbati MB. Silver nanoparticles biosynthesised using centella asiatica leaf extract: Apoptosis induction in MCF-7 breast cancer cell line. IET Nanobiotechnol. 2018; 12(7):994-1002. [DOI:10.1049/iet-nbt.2018.5069] [PMID] [DOI:10.1049/iet-nbt.2018.5069]
31. Redza-Dutordoir M, Averill-Bates DA. Activation of apoptosis signalling pathways by reactive oxygen species. Biochim Biophys Acta. 2016; 1863(12):2977-92. [DOI:10.1016/j.bbamcr.2016.09.012] [PMID] [DOI:10.1016/j.bbamcr.2016.09.012]
32. Basavegowda N, Idhayadhulla A, Lee YR. Preparation of Au and Ag nanoparticles using artemisia annua and their in vitro antibacterial and tyrosinase inhibitory activities. Mater Sci Eng C Mater Biol Appl. 2014; 43:58-64. [DOI:10.1016/j.msec.2014.06.043] [PMID] [DOI:10.1016/j.msec.2014.06.043]
33. Kamran S, Sinniah A, Abdulghani MAM, Alshawsh MA. Therapeutic potential of certain terpenoids as anticancer agents: A scoping review. Cancers (Basel). 2022; 14(5):1100. [DOI:10.3390/cancers14051100] [PMID] [DOI:10.3390/cancers14051100]
34. Sampath S, Veeramani V, Krishnakumar GS, Sivalingam U, Madurai SL, Chellan R. Evaluation of in vitro anticancer activity of 1,8-Cineole-containing n-hexane extract of callistemon citrinus (curtis) skeels plant and its apoptotic potential. Biomed Pharmacother. 2017; 93:296-307. [DOI:10.1016/j.biopha.2017.06.056] [PMID] [DOI:10.1016/j.biopha.2017.06.056]
35. Grassmann J. Terpenoids as plant antioxidants. Vitam Horm. 2005. [DOI:10.1016/S0083-6729(05)72015-X] [PMID] [DOI:10.1016/S0083-6729(05)72015-X]
36. Abu-Izneid T, Rauf A, Shariati MA, Khalil AA, Imran M, Rebezov M, et al. Sesquiterpenes and their derivatives-natural anticancer compounds: An update. Pharmacol Res. 2020; 161:105165. [DOI:10.1016/j.phrs.2020.105165] [PMID] [DOI:10.1016/j.phrs.2020.105165]
37. Rao VR. Antioxidant agents. In: Penta S, editor. Advances in structure and activity relationship of coumarin derivatives. Amsterdam: Elsevier; 2016. [DOI:10.1016/B978-0-12-803797-3.00007-2] [DOI:10.1016/B978-0-12-803797-3.00007-2]
38. Deb DD, Parimala G, Saravana Devi S, Chakraborty T. Effect of thymol on peripheral blood mononuclear cell PBMC and acute promyelotic cancer cell line HL-60. Chem Biol Interact. 2011; 193(1):97-106. [DOI:10.1016/j.cbi.2011.05.009] [PMID] [DOI:10.1016/j.cbi.2011.05.009]
39. Shahid-Ul-Islam, Rather LJ, Mohammad F. Phytochemistry, biological activities and potential of annatto in natural colorant production for industrial applications - A review. J Adv Res. 2016; 7(3):499-514. [PMID] [DOI:10.1016/j.jare.2015.11.002]
40. Jiang Z, Jacob JA, Loganathachetti DS, Nainangu P, Chen B. β-Elemene: Mechanistic studies on cancer cell interaction and its chemosensitization effect. Front Pharmacol. 2017; 8:105. [DOI:10.3389/fphar.2017.00105] [DOI:10.3389/fphar.2017.00105]
41. Wang Q, Wu LM, Zhao Y, Zhang XL, Wang NP. [The anticancer effect of artesunate and its mechanism (Chinese)]. Yao Xue Xue Bao. 2002; 37(6):477-8. [PMID]
42. Willoughby JA Sr, Sundar SN, Cheung M, Tin AS, Modiano J, Firestone GL. Artemisinin blocks prostate cancer growth and cell cycle progression by disrupting Sp1 interactions with the cyclin-dependent kinase-4 (CDK4) promoter and inhibiting CDK4 gene expression. J Biol Chem. 2009; 284(4):2203-13. [DOI:10.1074/jbc.m804491200] [PMID] [DOI:10.1074/jbc.M804491200]
43. Shafi G, Hasan TN, Syed NA, Al-Hazzani AA, Alshatwi AA, Jyothi A, et al. Artemisia Absinthium (AA): A novel potential complementary and alternative medicine for breast cancer. Mol Biol Rep. 2012; 39(7):7373-9. [DOI:10.1007/s11033-012-1569-0] [PMID] [DOI:10.1007/s11033-012-1569-0]
44. Ivanescu B, Miron A, Corciova A. Sesquiterpene lactones from artemisia genus: Biological activities and methods of analysis. J Anal Methods Chem. 2015; 2015:247685. [DOI:10.1155/2015/247685] [PMID] [DOI:10.1155/2015/247685]
45. Roh JL, Kim EH, Jang H, Shin D. Nrf2 inhibition reverses the resistance of cisplatin-resistant head and neck cancer cells to artesunate-induced ferroptosis. Redox Biol. 2017; 11:254-62. [DOI:10.1016/j.redox.2016.12.010] [PMID] [DOI:10.1016/j.redox.2016.12.010]
46. Kim J, Jung KH, Yan HH, Cheon MJ, Kang S, Jin X, et al. Artemisia Capillaris leaves inhibit cell proliferation and induce apoptosis in hepatocellular carcinoma. BMC Complement Altern Med. 2018; 18(1):147. [DOI:10.1186/s12906-018-2217-6] [PMID] [DOI:10.1186/s12906-018-2217-6]
47. Su SH, Sundhar N, Kuo WW, Lai SC, Kuo CH, Ho TJ, et al. Artemisia argyi extract induces apoptosis in human gemcitabine-resistant lung cancer cells via the PI3K/MAPK signaling pathway. J Ethnopharmacol. 2022; 299:115658. [DOI:10.1016/j.jep.2022.115658] [PMID] [DOI:10.1016/j.jep.2022.115658]
48. Rashmezad MA, Ali Asgary E, Tafvizi F, Sadat Shandiz SA, Mirzaie A. [Comparative study on cytotoxicity effect of biological and commercial synthesized nanosilver on human gastric carcinoma and normal lung fibroblast cell lines (Persian)]. Tehran Univ Med J. 2015; 72(12):799-807. [Link]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
حق تالیف (کپی رایت) برای مولفان محفوظ است.
صاحب امتیاز: دانشگاه علوم پزشکی قم
ناشر: انتشارات دانشگاه علوم پزشکی قم
شاپا چاپی: 7799-1375
شاپا الکترونیک: 1375-2008
ایمیل مجله: journal@muq.ac.ir
j.muq.ac@gmail.com
